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Registro Completo |
Biblioteca(s): |
Embrapa Florestas. |
Data corrente: |
10/06/2015 |
Data da última atualização: |
10/06/2015 |
Autoria: |
MARCUZZO, S. B.; ARAÚJO, M. M.; GASPARIN, E. |
Título: |
Plantio de espécies nativas para restauração de áreas em unidades de conservação: um estudo de caso no sul do Brasil. |
Ano de publicação: |
2015 |
Fonte/Imprenta: |
Floresta, Curitiba, v. 45, n. 1, p. 129-140, jan./mar. 2015. |
Idioma: |
Português |
Conteúdo: |
Este estudo buscou identificar espécies nativas potenciais para restauração de áreas degradadas em diferentes métodos de preparo de solo. O experimento foi implantado no Parque Estadual Quarta Colônia, RS, em blocos casualizados. No plantio, foi utilizado o modelo que considera espécies de preenchimento, juntamente com espécies de diversidade. Tratamentos: T1 - cova + plantio de espécies arbóreas (grupo de preenchimento - GP e de diversidade - GD); T2 - cova + plantio de espécies arbóreas + leguminosa (Vicia sativa); T3 - subsolagem + plantio de espécies arbóreas; e T4 - subsolagem + plantio de espécies arbóreas + leguminosa. As variáveis observadas, diâmetro do coleto, altura e mortalidade, foram submetidas a análise de variância. Para as 13 espécies arbóreas, as mesmas variáveis, além do diâmetro de copa, foram submetidas ao teste de Kruskal-Wallis. Constatou-se que o uso de subsolagem foi o melhor método, indiferentemente ao uso de leguminosa. Enterolobium contortisiliquum, Schinus terebinthifolius e Inga vera são indicadas para compor o grupo de preenchimento, enquanto que as espécies utilizadas para formar o grupo de diversidade devem ser introduzidas após a cobertura parcial do dossel, considerando necessitarem de ambiente mais favorável. |
Palavras-Chave: |
Área protegida; Espécie arbórea; Grupo sucessional; Preparo de solo. |
Categoria do assunto: |
-- |
Marc: |
LEADER 01865naa a2200169 a 4500 001 2017332 005 2015-06-10 008 2015 bl uuuu u00u1 u #d 100 1 $aMARCUZZO, S. B.; ARAÚJO, M. M.; GASPARIN, E. 245 $aPlantio de espécies nativas para restauração de áreas em unidades de conservação$bum estudo de caso no sul do Brasil. 260 $c2015 520 $aEste estudo buscou identificar espécies nativas potenciais para restauração de áreas degradadas em diferentes métodos de preparo de solo. O experimento foi implantado no Parque Estadual Quarta Colônia, RS, em blocos casualizados. No plantio, foi utilizado o modelo que considera espécies de preenchimento, juntamente com espécies de diversidade. Tratamentos: T1 - cova + plantio de espécies arbóreas (grupo de preenchimento - GP e de diversidade - GD); T2 - cova + plantio de espécies arbóreas + leguminosa (Vicia sativa); T3 - subsolagem + plantio de espécies arbóreas; e T4 - subsolagem + plantio de espécies arbóreas + leguminosa. As variáveis observadas, diâmetro do coleto, altura e mortalidade, foram submetidas a análise de variância. Para as 13 espécies arbóreas, as mesmas variáveis, além do diâmetro de copa, foram submetidas ao teste de Kruskal-Wallis. Constatou-se que o uso de subsolagem foi o melhor método, indiferentemente ao uso de leguminosa. Enterolobium contortisiliquum, Schinus terebinthifolius e Inga vera são indicadas para compor o grupo de preenchimento, enquanto que as espécies utilizadas para formar o grupo de diversidade devem ser introduzidas após a cobertura parcial do dossel, considerando necessitarem de ambiente mais favorável. 653 $aÁrea protegida 653 $aEspécie arbórea 653 $aGrupo sucessional 653 $aPreparo de solo 773 $tFloresta, Curitiba$gv. 45, n. 1, p. 129-140, jan./mar. 2015.
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Registro original: |
Embrapa Florestas (CNPF) |
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Biblioteca |
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Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
URL |
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Registro Completo
Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
Data corrente: |
05/09/2016 |
Data da última atualização: |
23/09/2019 |
Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
Autoria: |
PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; LEITE, C. R.; SANTOS, G. B.; ALFRANDIQUE, V. A. P.; GONÇALVES, L. H. S.; BALARO, M. F. A.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. |
Afiliação: |
Universidade Federal Fluminante (UFF) - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; JEFERSON FERREIRA DA FONSECA, CNPC; UFF - Niterói, RJ. |
Título: |
Color Doppler ultrasound as a substitute to laparoscopy for the CL count in superovulated sheep. |
Ano de publicação: |
2016 |
Fonte/Imprenta: |
Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 473, Jul./Sept. 2016. |
Idioma: |
Inglês |
Notas: |
Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain, September 9th and 10th, 2016. |
Conteúdo: |
Abstract: This study aimed to evaluate the Color Doppler ultrasound as a substitute for laparoscopy for couting of corpora lutea (CL) in superovulated sheep. Twenty-five nulliparous Santa Ines ewes (11.9 ± 1.1 months old, BCS: 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, Sao Paulo, Brazil) were given intramuscularly (IM). Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered IM. The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg), IM. At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, Sao Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, Sao Paulo-SP, Brazil) were administered IM. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. Twelve hours before embryo collection, Color Doppler ultrasound exams were performed using Sonoscape S6® equipment (Sonoscape, Yizhe Building, Yuquan Road, Shenzhen, China), coupled to a 7.5 MHz linear transducer (transrectal) to predict the number of corpora lutea (CL-DOPPLER). Previous to embryos collection, the number of CLs was determined again by laparoscopy (CLLAPARO). The CL-DOPPLER and CL-LAPARO were compared through the Pearson's correlation coefficient, Simple Linear Regression Analysis and Intraclass Correlation Coefficient (ICC). For all tests, P < 0.01 was considered as statistically significant. A high correlation between the number of CL-DOPPLER and CLLAPARO (r = 0.92; r2 = 0.85; P < 0.01) and an excellent ICC (0.93; P < 0.01) were obtained. In conclusion, the Color Doppler ultrasonography is highly efficient to estimate the number of CLs in superovulated ewes. This represents an important advance because it replaces invasive laparoscopic procedure, avoids fasting, drugs use and unnecessary handling in animals that did not respond to the treatment. Therefore, the Color Doppler ultrasound can replace the laparoscopy for the assessment of superovulated sheep. [Ultrassonografia modo Doppler colorido como substituta à laparoscopia na contagem de CL em ovelhas superovuladas]. Resumo: Objetivou-se a adoção da ultrassonografia modo Doppler colorido como substituta à laparoscopia na avaliação de ovelhas da raça Santa Inês superovuladas. Vinte e cinco ovelhas nulíparas da raça Santa Inês (11,9 ± 1,1 meses de idade; ECC: 2,8 ± 0,3) foram superovuladas, utilizando-se o conceito do protocolo Dia 0. Para sincronização prévia da emergência folicular, manteve-se por seis dias uma esponja vaginal contendo 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil); 24 horas antes da remoção do implante, aplicou-se por via intramuscular (IM) 300 UI de eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil) e 0,24mg de cloprostenol sódico (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brasil). Trinta e seis horas após a remoção da esponja, os animais receberam 25?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil), IM. A superovulação iniciou 80 horas após a retirada da esponja. Utilizou-se 200 mg de FSH por animal (Folltropin-V®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canadá) em seis doses decrescentes a cada 12 horas (50/50, 30/30, 20/20 mg), IM. Na última dose de FSH, aplicou-se 0,24 mg de cloprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e, 24 horas após, 25 ?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil), ambos IM. Em paralelo, na primeira dose de FSH uma nova esponja (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil) foi inserida e removida na penúltima dose deste hormônio. Após a última dose de FSH, realizou-se monta natural controlada a cada 12 horas até o final do estro. Doze horas antes da colheita de embriões, estimou-se o número de corpos lúteos (CL-DOPPLER) por meio da ultrassonografia modo Doppler colorido com o auxílio do equipamento Sonoscape S6® (SonoScape, Shenzhen, China), com transdutor linear de 7,5 MHz acoplado a um suporte plástico rígido para o acesso transretal. Previamente à colheita de embriões, o número de CLs foi novamente determinado por meio da laparoscopia (CL LAPARO). As variáveis CL-DOPPLER e CL-LAPARO foram comparadas entre si por meio do Índice de Correlação de Person, Análise de Regressão Linear Simples, e Índice de Correlação Intraclasse (ICC). Para todos os testes, considerouse 1% de significância. Obteve-se uma alta correlação entre a contagem de CL-DOPPLER e CL-LAPARO (r=0,92; r2=0,85; p<0,01) e um excelente ICC (0,93; p<0,01). Em conclusão, a alta eficiência da ultrassonografia modo Doppler colorido para a estimativa do número de CLs em ovelhas superovuladas configura um avanço importante, pois elimina a necessidade de uma intervenção laparoscópica invasiva, jejum, uso de fármacos e manipulação desnecessária em animais que não responderam ao tratamento. Assim, a ultrassonografia modo Doppler colorido pode substituir a laparoscopia para a avaliação de resposta superovulatória em ovinos. MenosAbstract: This study aimed to evaluate the Color Doppler ultrasound as a substitute for laparoscopy for couting of corpora lutea (CL) in superovulated sheep. Twenty-five nulliparous Santa Ines ewes (11.9 ± 1.1 months old, BCS: 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, Sao Paulo, Brazil) were given intramuscularly (IM). Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered IM. The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg), IM. At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, Sao Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, Sao Paulo-SP, Brazil) were administered IM. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. Twelve hours before embryo collection, Color Doppler ultrasound exams were performed using Sonoscape S6® equipment (Sonoscape, Yizhe Building, Yuquan Road, Shenzhen, China), coupled to a 7.5 MHz line... Mostrar Tudo |
Palavras-Chave: |
Doppler ultrasound; Oestrus synchronization; Ultra-Som. |
Thesagro: |
Corpo Lúteo; Laparoscopia; Ovino; Reprodução animal; Sincronização do cio; Superovulação. |
Thesaurus NAL: |
Corpus luteum; Reproduction; Sheep; Superovulation; Ultrasonography. |
Categoria do assunto: |
L Ciência Animal e Produtos de Origem Animal |
URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/147087/1/CNPC-2016-Color.pdf
|
Marc: |
LEADER 06893nam a2200385 a 4500 001 2052401 005 2019-09-23 008 2016 bl uuuu u00u1 u #d 100 1 $aPINTO, P. H. N. 245 $aColor Doppler ultrasound as a substitute to laparoscopy for the CL count in superovulated sheep.$h[electronic resource] 260 $aAnimal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 473, Jul./Sept. 2016.$c2016 500 $aProceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain, September 9th and 10th, 2016. 520 $aAbstract: This study aimed to evaluate the Color Doppler ultrasound as a substitute for laparoscopy for couting of corpora lutea (CL) in superovulated sheep. Twenty-five nulliparous Santa Ines ewes (11.9 ± 1.1 months old, BCS: 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, Sao Paulo, Brazil) were given intramuscularly (IM). Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered IM. The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg), IM. At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, Sao Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, Sao Paulo-SP, Brazil) were administered IM. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. Twelve hours before embryo collection, Color Doppler ultrasound exams were performed using Sonoscape S6® equipment (Sonoscape, Yizhe Building, Yuquan Road, Shenzhen, China), coupled to a 7.5 MHz linear transducer (transrectal) to predict the number of corpora lutea (CL-DOPPLER). Previous to embryos collection, the number of CLs was determined again by laparoscopy (CLLAPARO). The CL-DOPPLER and CL-LAPARO were compared through the Pearson's correlation coefficient, Simple Linear Regression Analysis and Intraclass Correlation Coefficient (ICC). For all tests, P < 0.01 was considered as statistically significant. A high correlation between the number of CL-DOPPLER and CLLAPARO (r = 0.92; r2 = 0.85; P < 0.01) and an excellent ICC (0.93; P < 0.01) were obtained. In conclusion, the Color Doppler ultrasonography is highly efficient to estimate the number of CLs in superovulated ewes. This represents an important advance because it replaces invasive laparoscopic procedure, avoids fasting, drugs use and unnecessary handling in animals that did not respond to the treatment. Therefore, the Color Doppler ultrasound can replace the laparoscopy for the assessment of superovulated sheep. [Ultrassonografia modo Doppler colorido como substituta à laparoscopia na contagem de CL em ovelhas superovuladas]. Resumo: Objetivou-se a adoção da ultrassonografia modo Doppler colorido como substituta à laparoscopia na avaliação de ovelhas da raça Santa Inês superovuladas. Vinte e cinco ovelhas nulíparas da raça Santa Inês (11,9 ± 1,1 meses de idade; ECC: 2,8 ± 0,3) foram superovuladas, utilizando-se o conceito do protocolo Dia 0. Para sincronização prévia da emergência folicular, manteve-se por seis dias uma esponja vaginal contendo 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil); 24 horas antes da remoção do implante, aplicou-se por via intramuscular (IM) 300 UI de eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil) e 0,24mg de cloprostenol sódico (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brasil). Trinta e seis horas após a remoção da esponja, os animais receberam 25?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil), IM. A superovulação iniciou 80 horas após a retirada da esponja. Utilizou-se 200 mg de FSH por animal (Folltropin-V®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canadá) em seis doses decrescentes a cada 12 horas (50/50, 30/30, 20/20 mg), IM. Na última dose de FSH, aplicou-se 0,24 mg de cloprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e, 24 horas após, 25 ?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil), ambos IM. Em paralelo, na primeira dose de FSH uma nova esponja (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil) foi inserida e removida na penúltima dose deste hormônio. Após a última dose de FSH, realizou-se monta natural controlada a cada 12 horas até o final do estro. Doze horas antes da colheita de embriões, estimou-se o número de corpos lúteos (CL-DOPPLER) por meio da ultrassonografia modo Doppler colorido com o auxílio do equipamento Sonoscape S6® (SonoScape, Shenzhen, China), com transdutor linear de 7,5 MHz acoplado a um suporte plástico rígido para o acesso transretal. Previamente à colheita de embriões, o número de CLs foi novamente determinado por meio da laparoscopia (CL LAPARO). As variáveis CL-DOPPLER e CL-LAPARO foram comparadas entre si por meio do Índice de Correlação de Person, Análise de Regressão Linear Simples, e Índice de Correlação Intraclasse (ICC). Para todos os testes, considerouse 1% de significância. Obteve-se uma alta correlação entre a contagem de CL-DOPPLER e CL-LAPARO (r=0,92; r2=0,85; p<0,01) e um excelente ICC (0,93; p<0,01). Em conclusão, a alta eficiência da ultrassonografia modo Doppler colorido para a estimativa do número de CLs em ovelhas superovuladas configura um avanço importante, pois elimina a necessidade de uma intervenção laparoscópica invasiva, jejum, uso de fármacos e manipulação desnecessária em animais que não responderam ao tratamento. Assim, a ultrassonografia modo Doppler colorido pode substituir a laparoscopia para a avaliação de resposta superovulatória em ovinos. 650 $aCorpus luteum 650 $aReproduction 650 $aSheep 650 $aSuperovulation 650 $aUltrasonography 650 $aCorpo Lúteo 650 $aLaparoscopia 650 $aOvino 650 $aReprodução animal 650 $aSincronização do cio 650 $aSuperovulação 653 $aDoppler ultrasound 653 $aOestrus synchronization 653 $aUltra-Som 700 1 $aBRAGANÇA, G. M. 700 1 $aLEITE, C. R. 700 1 $aSANTOS, G. B. 700 1 $aALFRANDIQUE, V. A. P. 700 1 $aGONÇALVES, L. H. S. 700 1 $aBALARO, M. F. A. 700 1 $aFONSECA, J. F. da 700 1 $aBRANDÃO, F. Z.
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