04114nam a2200313 a 450000100080000000500110000800800410001910000230006024501850008326000160026830000100028450002210029452029760051565000210349165000220351265000130353465000220354765000160356965000210358565000200360665300230362665300230364965300210367265300260369365300230371965300130374265300230375565300220377821123562023-08-22       2019    bl uuuu  m   00u1 u    #d1 aSILVA, H. F. de J.  aDiversidade genética, multiplicação e conservação in vitro de juazeiro (Zizyphus joazeiro Mart.) e amburana (Amburana cearensis [Allemão] A. C. Smith).h[electronic resource]  a2019.c2019  a94 f.  aTese (Doutorado em Produção Vegetal) - Universidade Federal de Uberlândia, Uberlândia. Orientado por José Magno Queiroz Luz; coorientador por Simone Abreu Asmar; Ana Valéria Vieira de Souza, Embrapa Semiárido.  aO juazeiro e a amburana são espécies nativas da Caatinga e que possuem múltiplos usos, atribuídos aos valores alimentícios, medicinais, madeireiros e ambientais que essas plantas apresentam. Entretanto, suas áreas naturais encontram-se sob alto processo de antropização, o que coloca essas espécies em condições vulneráveis de extinção. O objetivo desse trabalho foi realizar estudos visando caracterizar a divergência genética de germoplasmas nativos, bem como estabelecer um protocolo de multiplicação e conservação das mesmas. Os trabalhos foram conduzidos na Embrapa Semiárido, Petrolina- PE, e nas Universidades Federais de Uberlândia e Lavras. Para a multiplicação in vitro do juazeiro buscou-se induzir brotações dos explantes (mini estacas) utilizando-se doses de ANA (três doses) e BAP (cinco doses) ? fatorial 3 x 5 ? e para o enraizamento adotou-se duas auxinas, ANA e AIB, em quatro doses cada ? fatorial 2 x 4 . No processo de conservação in vitro foram testados os reguladores osmóticos, manitol e sorbitol, ambos em duas doses, mais o tratamento testemunha, o que constituiu um fatorial 2 x 4 + 1. Essas plantas foram conservadas por 240 dias até a retomada de crescimento, que durou 60 dias. Para a multiplicação do juazeiro indica-se a dose de 0,1 mg L-1 de ANA e 1,0 mg L-1 para indução de brotações, e como melhor indutor de enraizamento obteve-se AIB. No processo de conservação O sorbitol a 5 mg L-1 mostrou-se mais adequado à conservação in vito de Z. joazeiro. Na multiplicação in vitro da amburana foram testados quatro meios de cultura ? MS, MS/2, WPM e WPM/2 ? quatro doses de BAP e duas doses de sacarose, o que constituiu um fatorial 4 x 4 x 2, com seis repetições e em DIC. Na segunda parte, referente ao alongamento estudou-se o efeito das doses 0,05 e 0,1 mg L-1 das auxinas AIA, ANA e AIB, mais a testemunha, em arranjo fatorial 3 x 2 + 1, com quatro repetições. A terceira fase, relativa ao enraizamento adotou-se o AIB em três doses (0,5; 1 e 2 mg L-1 ) e quatro tempos de permanência dos explantes ao efeito desse regulador de crescimento, perfazendo um fatorial 3 x 4 e quatro repetições. Nesse artigo concluiu-se que o meio MS com 30 g L-1 de sacarose e 0,6 mg L-1 de BAP promoveu melhores respostas à multiplicação da amburana e para a indução do enraizamento recomenda-se utilizar 2 mg L-1 de AIB. O experimento de diversidade genética baseou-se nos padrões genéticos de 68 acessos de amburana através de análises citométricas e por marcadores moleculares ISSR. Aplicou- se análises multivariadas empregando-se diferentes métodos de agrupamento. O método de otimização empregado (Tocher) foi concordante com todos os modelos hierárquicos utilizados. O acesso BB116 foi o que apresentou padrão genético mais divergente dos demais genótipos e o método de Ligação Média foi o que permitiu a formação de maior quantidade de grupos contendo acessos similares.  aMedicinal plants  aNatural resources  aCaatinga  aCultura de Tecido  aGermoplasma  aPlanta Medicinal  aRecurso Natural  aAmburana cearensis  aAmburana de cheiro  aCultivo in vitro  aDiversidade genética  aImburana de cheiro  aJuazeiro  aPlanta da Caatinga  aZizyphus joazeiro