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| Registros recuperados : 54.411 | |
| 1341. |  | SANTOS, F. C. dos; GUERREIRO, Q. L. de M.; OLIVEIRA JUNIOR, R. C. de; BELDINI, T. P.; OLIVEIRA, D. R. de. Trocas gasosas entre metano e óxido nitroso entre solo e atmosfera em diferentes tipos de cobertura na região oeste do Pará, Brasil. Revista Ibero-Americana de Ciências Ambientais, v. 9, n. 6, p. 1-13, 2018. Edição Especial do Congresso de Gestão Ambiental do Baixo Amazonas (CONGABA) - Ago 2018.| Biblioteca(s): Embrapa Amazônia Oriental. |
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| 1342. | | MARQUES, A. de S.; PINHEIRO, E. F. M.; OLIVEIRA, A. P. de S.; CAMPOS, D. V. B. de; OLIVEIRA, R. S. de; SILVA, R. M. da; MATOS, C. F. Tratamento da água residuária da bovinocultura utilizando resíduos agroflorestais: retenção de poluentes ambientais. Revista Virtual de Química, v. 12, n. 2, p. 335-344, mar./abr. 2020| Biblioteca(s): Embrapa Solos. |
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| 1343. | | MORANDI, P. S.; MARIMON, B. S.; MARIMON-JUNIOR, B. H.; RATTER, J. A.; FELDPAUSCH, T. R.; COLLI, G. R.; MUNHOZ, C. B. R.; SILVA JÚNIOR, M. C. da; LIMA, E. de S.; HAIDAR, R. F.; ARROYO, L.; MURAKAMI, A. A.; AQUINO, F. de G.; WALTER, B. M. T.; RIBEIRO, J. F.; FRANÇOSO, R.; ELIAS, R.; OLIVEIRA, E. A. de; REIS, S. M.; OLIVEIRA, B. de; NEVES, E. C. das; NOGUEIRA, D. S.; LIMA, H. S.; CARVALHO, T. P. de; RODRIGUES, S. A.; VILLARROEL, D.; FELFILI, J. M.; PHILLIPS, O. L. Tree diversity and above-ground biomass in the South America Cerrado biome and their conservation implications. Biodiversity and Conservation, v. 29, n. 5, p. 1519-1536, 2020.| Biblioteca(s): Embrapa Cerrados; Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 1344. | | FRAZÃO, H. da S.; LIMA, L. H. C.; ROCHA, S. L. da; DIAS, J. M. C. de S.; AMARAL, Z. P.; PRAÇA, L. B.; SILVA, A. C. e; OLIVEIRA, H. F. F. de; OLIVEIRA, M. W. M. de; MORAES, M. C. B.; ANJOS, S. S. N.; CASTRO, C. S. P. de; COUTINHO, M. V.; SANTANA, E. de F. Treinamento em noções de segurança e sistema da qualidade em laboratório. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2007. 79 p. (Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Documentos, 218).| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 1345. | | OLIVEIRA, S. R. N. de; OLIVEIRA, M. A. S. de; BRANDÃO, F. R.; MAJOLO, C.; CHAVES, F. C. M.; CHAGAS, E. C. Toxicity of Lippia origanoides essential oil in tambaqui (Colossoma macropomum) and its effect against Aeromonas hydrophila. Boletim do Instituto de Pesca, v. 44, n. 2, p. 1-7, 2018.| Biblioteca(s): Embrapa Amazônia Ocidental. |
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| 1347. | | HOFFMANN-CAMPO, C. B.; MOSCARDI, F.; CORRÊA-FERREIRA, B. S.; OLIVEIRA, L. J.; SOSA-GÓMEZ, D. R.; PANIZZI, A. R.; CORSO, I. C.; GAZZONI, D. L.; OLIVEIRA, E. B. de. Trabalhador no cultivo de grãos e oleaginosas: soja - MIP. Curitiba: SENAR-PR, 2005. 82 p.| Biblioteca(s): Embrapa Soja. |
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| 1348. | | OLIVEIRA, R. S. de; OLIVEIRA NETO, O. B. de; WANCHAO, N.; COSTA, P. H. A. da; EVANGELISTA, I. B. R.; LEONARDECZ, E.; ROMANO, E.; COUTINHO, M. V.; VIANA, A. A. B.; SILVA, M. C. M. da S.; ROCHA, T. L.; GROSSI DE SÁ, M. F. Transformação de algodoeiro via tubo polínico: otimização e perspectivas de aplicação. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2007. 30 p. (Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Boletim de pesquisa e desenvolvimento, 184).| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 1349. | | COSTA, P. H. A.; OLIVEIRA NETO, O. B.; OLIVEIRA, R. S.; GROSSI DE SÁ, M. F. Transformação genética de plantas de algodão via tubo polínico com o gene cry1Ia12 visando resistência a insetos-praga. In: WORKSHOP INTERAÇÃO MOLECULAR PLANTA-PRAGAS, 2., 2007, Brasília, DF. II Workshop Interação Molecular Planta-Praga. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2007. (Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Documentos, 229).| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 1350. | | COSTA, P. H. A.; OLIVEIRA-NETO, O. B.; OLIVEIRA, R. S.; GROSSI-de-SÁ, M. F. Transformação genética via tubo polínico de algodão com o gene cry1Ia12 visando resistência a insetos-praga. In : ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 12., 2007, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2007. p. 83.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 1351. | | VALINHAS, M. C.; OLIVEIRA, K. E. S. de; OLIVEIRA, R. P. de; SOUSA, S. M. de; CARNEIRO, A. A.; CARNEIRO, N. P. Transformação transiente de embriões imaturos de milho L3 como método de seleção de RNA-guias para a técnica de CRISPR/Cas9. In: CONGRESSO NACIONAL DE MILHO E SORGO, 33., 2022, Sete Lagoas. Brasil: 200 anos de independência: sustentabilidade e desafios para a cadeia produtiva de grãos: resumos. Sete Lagoas: Associação Brasileira de Milho e Sorgo, 2022. Evento online.| Biblioteca(s): Embrapa Milho e Sorgo. |
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| 1352. | | OLIVEIRA, R. S. de; OLIVEIRA NETO, O. B.; MOURA, H. F. N.; MACEDO, L. L. P. de; ARRAES, F. B. M.; LUCENA, W. A.; LOURENCO TESSUTTI, I. T.; BARBOSA, A. A. de D.; SILVA, M. C. M. da; GROSSI DE SA, M. F. Transgenic cotton plants expressing Cry1Ia12 toxin confer resistance to fall armyworm (Spodoptera frugiperda) and cotton boll weevil (Anthonomus grandis). Frontiers in Plant Science, v. 7, article 165 , 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 1353. | | OLIVEIRA, R. S. de; OLIVEIRA NETO, O. B.; MOURA, H. F. N.; MACEDO, L. L. P. de; ARRAES, F. B M.; LUCENA, W. A.; LOURENCO, I. T.; BARBOSA, A. de D.; SILVA, M. C. M. da; SA, M. F. G. de. Transgenic cotton plants expressing Cry1la12 toxin confer resistance to fall armyworm (Spodoptera frugiperda) and cotton boll weevil (Anthonomus grandis). Frontiers in Plant Science, v. 7, Article 165, 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Algodão. |
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| 1354. | | NUNES, M. A.; OLIVEIRA, C. A. L. de; OLIVEIRA, M. L. de; KITAJIMA, E. W.; HILF, M. E.; GOTTWALD, T. R.; ASTUA, J. de F. Transmission of Citrus leprosis virus C by Brevipalpus phoenicis (Geijskes) to Alternative Host Plants Found in Citrus Orchards. Plant Disease, v. 96, n. 7., 2012.| Biblioteca(s): Embrapa Mandioca e Fruticultura. |
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| 1355. | | OLIVEIRA, M. M. de; OLIVEIRA, J. P. de; RANGEL, P. H. N.; ABREU, A. G. de; COSTA, J. G. C. da. Variabilidade em acessos introduzidos de feijão-comum de grão carioca. In: SEMINÁRIO JOVENS TALENTOS, 9., 2015, Santo Antônio de Goiás. Coletânea dos resumos apresentados. Santo Antônio de Goiás: Embrapa Arroz e Feijão, 2015. p. 55. (Embrapa Arroz e Feijão. Documentos, 309).| Biblioteca(s): Embrapa Arroz e Feijão. |
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| 1356. | | OLIVEIRA, I. S. R. de; SILVA, M. S. R. de A. da; OLIVEIRA JÚNIOR, J. Q. de; ZILLI, J. E.; FARIA, S. M. de; JESUS, E. da C. Validação de estirpes de Rizóbios selecionadas para parapiptadenia rigia (Benth.) Brenan em solo não estéril. In: REUNIÃO BRASILEIRA DE FERTILIDADE DO SOLO E NUTRIÇÃO DE PLANTAS, 31.; REUNIÃO BRASILEIRA SOBRE MICORRIZAS, 15.; SIMPÓSIO BRASILEIRO DE MICROBIOLOGIA DO SOLO, 13.; REUNIÃO BRASILEIRA DE BIOLOGIA DO SOLO, 10., 2014, Araxá. Fertilidade e biologia do solo: integração e tecnologias para todos: anais. Araxá: Núcleo Regional Leste da Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2014. FertBio 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Agrobiologia. |
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| 1357. | | COSTA, S. N.; OLIVEIRA, L. S.; VELAME, D.; OLIVEIRA, S. A. S. de; AMORIM, E. P.; HADDAD, F.; BARBOSA, F. F. L. Validação de marcadores SSR para estudos de diversidade genética de Fusarium oxysporum f. sp. Cubense. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE RECURSOS GENÉTICOS, 2., 2012, Belém, PA. Anais... Brasília, DF: Sociedade Brasileira de Recursos Genéticos, 2012. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Mandioca e Fruticultura. |
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| 1358. | | OLIVEIRA, E. M. M.; FERREIRA, T.; OLIVEIRA, T. C.; LIMA, I. S.; VITÓRIO, F.; FARAH, A. Validação de marcador molecular para detecção de cevada em café comercial. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE CIÊNCIA E TECNOLOGIA DE ALIMENTOS, 23., 2012, Campinas. Anais... Campinas: SBCTA, 2012. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria de Alimentos. |
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| 1359. | | CAMOLESE, A. C.; SILVA, D. C. G.; NOVAES, R. M. L.; CRUZ, A. S.; RINCÃO, M. P.; OLIVEIRA, A. M. A.; OLIVEIRA, M. F.; ABDELNOOR, R. V.; ARIAS, C. A. A.; MARCELINO-GUIMARÃES, F. C. Validação de SNPs associados à resistência a podridão radicular de Phytophthora. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE FITOPATOLOGIA, 47.; SIMPÓSIO BRASILEIRO DE MOFO BRANCO, 2014, Londrina. Desafios futuros: anais. Londrina: SBF, 2014. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Soja. |
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| Registros recuperados : 54.411 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Milho e Sorgo. |
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Data corrente: |
11/02/2017 |
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Data da última atualização: |
14/04/2021 |
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Tipo da produção científica: |
Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento |
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Autoria: |
GOMES, E. A.; OLIVEIRA, C. C. A. de; LANA, U. G. de P.; OLIVEIRA-PAIVA, C. A.; GUIMARAES, L. J. M. |
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Afiliação: |
ELIANE APARECIDA GOMES, CNPMS; CARLA CRISTINTA AVELAR DE OLIVEIRA, Bolsista; UBIRACI GOMES DE PAULA LANA, CNPMS; CHRISTIANE ABREU DE OLIVEIRA PAIVA, CNPMS; LAURO JOSE MOREIRA GUIMARAES, CNPMS. |
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Título: |
Microrganismos endofíticos associados a raízes de plantas de milho (Zea mays L.) cultivadas em solo de cerrado com baixa e alta disponibilidade de fósforo |
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Ano de publicação: |
2016 |
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Fonte/Imprenta: |
Sete Lagoas: Embrapa Milho e Sorgo, 2016. |
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Páginas: |
28 p. |
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Série: |
(Embrapa Milho e Sorgo. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 153). |
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Idioma: |
Português |
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Conteúdo: |
O fósforo (P) é o segundo nutriente mais limitante na agricultura, o que leva à necessidade de aplicação de altas doses de fertilizantes, que torna a correção da fertilidade do solo um processo de elevados custos econômicos e ambientais para a produção agrícola. As plantas absorvem P principalmente na forma de íon-ortofosfato necessitando de contato direto das raízes com este elemento na solução do solo. Em ambientes de baixa disponibilidade, principalmente, os microrganismos são fundamentais à nutrição das plantas auxiliando na solubilização e aquisição de nutriente. O objetivo desse trabalho foi caracterizar as comunidades de microrganismos endofíticos associados a raízes de genótipos de milho contrastantes na eficiência de aquisição de P, cultivados em solos com alta e baixa disponibilidade desse nutriente. Amostras de raízes das linhagens de milho L3 (eficiente na aquisição de P) e L22 (ineficiente na aquisição de P) e do híbrido L3xL22 foram lavadas em uma solução de pirofosfato de sódio 0,1% (m/v) por 60 min para eliminar o solo rizosférico. O DNA foi extraído das raízes, amplificado com primers específicos para fungos e bactérias e analisado por PCR-DGGE e sequenciado para identificação das comunidades microbianas. A análise dos géis de DGGE mostrou uma elevada diversidade microbiana, tanto no grupo de bactérias quanto de fungos endofíticos nos genótipos avaliados. De uma maneira geral, o nível de P no solo e os genótipos foram os fatores predominantes no agrupamento das bactérias e dos fungos. O sequenciamento de bandas das amostras dos géis indicou 50% dos microrganismos como bactérias não cultiváveis, enquanto o sequenciamento das amostras com primers específicos para fungos revelou a maior incidência de representantes dos filos Ascomycota e Glomeromycota (fungos micorrízicos arbusculares), principalmente dos gêneros Dothideomycete e Scutellospora, respectivamente, e também de fungos não cultiváveis. Os resultados demonstram influência do nível de P e do genótipo da planta hospedeira sobre a diversidade de comunidades microbianas que colonizam raízes de milho. MenosO fósforo (P) é o segundo nutriente mais limitante na agricultura, o que leva à necessidade de aplicação de altas doses de fertilizantes, que torna a correção da fertilidade do solo um processo de elevados custos econômicos e ambientais para a produção agrícola. As plantas absorvem P principalmente na forma de íon-ortofosfato necessitando de contato direto das raízes com este elemento na solução do solo. Em ambientes de baixa disponibilidade, principalmente, os microrganismos são fundamentais à nutrição das plantas auxiliando na solubilização e aquisição de nutriente. O objetivo desse trabalho foi caracterizar as comunidades de microrganismos endofíticos associados a raízes de genótipos de milho contrastantes na eficiência de aquisição de P, cultivados em solos com alta e baixa disponibilidade desse nutriente. Amostras de raízes das linhagens de milho L3 (eficiente na aquisição de P) e L22 (ineficiente na aquisição de P) e do híbrido L3xL22 foram lavadas em uma solução de pirofosfato de sódio 0,1% (m/v) por 60 min para eliminar o solo rizosférico. O DNA foi extraído das raízes, amplificado com primers específicos para fungos e bactérias e analisado por PCR-DGGE e sequenciado para identificação das comunidades microbianas. A análise dos géis de DGGE mostrou uma elevada diversidade microbiana, tanto no grupo de bactérias quanto de fungos endofíticos nos genótipos avaliados. De uma maneira geral, o nível de P no solo e os genótipos foram os fatores predominantes no agrupamento ... Mostrar Tudo |
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Thesagro: |
Microbiologia do solo; Nutriente; População microbiana. |
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Categoria do assunto: |
S Ciências Biológicas |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/160950/1/bol-153.pdf
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Marc: |
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520 $aO fósforo (P) é o segundo nutriente mais limitante na agricultura, o que leva à necessidade de aplicação de altas doses de fertilizantes, que torna a correção da fertilidade do solo um processo de elevados custos econômicos e ambientais para a produção agrícola. As plantas absorvem P principalmente na forma de íon-ortofosfato necessitando de contato direto das raízes com este elemento na solução do solo. Em ambientes de baixa disponibilidade, principalmente, os microrganismos são fundamentais à nutrição das plantas auxiliando na solubilização e aquisição de nutriente. O objetivo desse trabalho foi caracterizar as comunidades de microrganismos endofíticos associados a raízes de genótipos de milho contrastantes na eficiência de aquisição de P, cultivados em solos com alta e baixa disponibilidade desse nutriente. Amostras de raízes das linhagens de milho L3 (eficiente na aquisição de P) e L22 (ineficiente na aquisição de P) e do híbrido L3xL22 foram lavadas em uma solução de pirofosfato de sódio 0,1% (m/v) por 60 min para eliminar o solo rizosférico. O DNA foi extraído das raízes, amplificado com primers específicos para fungos e bactérias e analisado por PCR-DGGE e sequenciado para identificação das comunidades microbianas. A análise dos géis de DGGE mostrou uma elevada diversidade microbiana, tanto no grupo de bactérias quanto de fungos endofíticos nos genótipos avaliados. De uma maneira geral, o nível de P no solo e os genótipos foram os fatores predominantes no agrupamento das bactérias e dos fungos. O sequenciamento de bandas das amostras dos géis indicou 50% dos microrganismos como bactérias não cultiváveis, enquanto o sequenciamento das amostras com primers específicos para fungos revelou a maior incidência de representantes dos filos Ascomycota e Glomeromycota (fungos micorrízicos arbusculares), principalmente dos gêneros Dothideomycete e Scutellospora, respectivamente, e também de fungos não cultiváveis. Os resultados demonstram influência do nível de P e do genótipo da planta hospedeira sobre a diversidade de comunidades microbianas que colonizam raízes de milho.
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700 1 $aLANA, U. G. de P.
700 1 $aOLIVEIRA-PAIVA, C. A.
700 1 $aGUIMARAES, L. J. M.
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Registro original: |
Embrapa Milho e Sorgo (CNPMS) |
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