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| Registros recuperados : 11 | |
| 4. |  | SOUZA, J. R. T. de; IBELLI, A. M. G.; NOGUEIRA, A. R. de A.; REGITANO, L. C. de A. Avaliação de métodos alternativos para transporte e para armazenamento de tecidos e de amostras de RNA. In: SIMPÓSIO DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA EMBRAPA PECUÁRIA SUDESTE, 2., 2007, São Carlos, SP. Anais... São Carlos: Embrapa Pecuária Sudeste, 2007. (Embrapa Pecuária Sudeste. Documentos, 76).| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 6. | | IBELLI, A. M. G.; RIBEIRO, A. R. B.; SOUZA, J. R. T. de; ALENCAR, M. M. de; REGITANO, L. C. de A. Escolha e padronização de um protocolo de hemólise de amostras para extração de RNA. In: JORNADA CIENTÍFICA-EMBRAPA SÃO CARLOS, 2009, São Carlos, SP. Anais... São Carlos, SP: Embrapa Pecuária Sudeste: Embrapa Instrumentação Agropecuária, 2009. Editado por Luiz Francisco Zafalon, Simone Cristina Méo Niciura. p. 21| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 8. | | RIBEIRO, A. R. B.; ALENCAR, M. M. de; IBELLI, A. M. G.; CARVALHO, F. M.; SOUZA, J. R. T.; REGITANO, L. C. de A. Expressão de genes das proteínas de choque térmico em bovinos Nelore, Senepol x Nelore e Angus x Nelore após estresse térmico. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE GENÉTICA, 55., 2009, Águas de Lindóia. Anais... Águas de Lindóia: SBG, 2009. p. 210.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 9. | | IBELLI, A. M. G.; SOUZA, J. R. T.; GASPARIN, G.; OLIVEIRA, M. C. de S.; ALENCAR, M. M. de; COUTINHO, L. L.; VENERONI, G. B.; TIZIOTO, P. C.; REGITANO, L. C. de A. Expressão gênica de bovinos Nelore e cruzados Canchim X Nelore, Simental X Nelore e Angus X Nelore infestados com carrapato Rhipicephalus (Boophilus) microplus. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE GENÉTICA, 55., 2009, Águas de Lindóia, SP. Resumos... Ribeirão Preto: Sociedade Brasileira de Genética, 2009. p. 210. p. 210| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 10. | | IBELLI, A. M. G.; ANDRÉO, R.; COUTINHO, L. L.; GOUVEIA, J. J. S.; NAKATA, L. C.; OLIVEIRA, M. C. de S.; SOUZA, J. R. T.; ZAROS, L. G.; REGITANO, L. C. de A. Seleção de genes constitutivos para estudos de expressão gênica em abomaso e linfonodo abomasal de bovinos In: CONGRESSO BRASILEIRO DE GENÉTICA, 53., 2007, Águas de Lindóia, SP. Anais... Águas de Lindóia: SBG, 2007. p. 151| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 11. | | RIBEIRO, A. R. B.; ALENCAR, M. M. de; REGITANO, L. C. de A.; OLIVEIRA, M. C. de S.; IBELLI, A. M. G.; SOUZA, J. R. T. de; PAÇÓ, A. L.; RAMOS, A. C. L.; MIYAJIMA, M. M.; CALABRIA, P.; CHIMENEZ, V. Respostas fisiológicas de bovinos Nelore, Senepol x Nelore e Angus x Nelore submetidos a teste de tolerância ao calor. In: SIMPÓSIO BRASILEIRO DE MELHORAMENTO ANIMAL, 7., 2008, São Carlos, SP. Anais... São Carlos, SBMA, 2008.| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| Registros recuperados : 11 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Pecuária Sudeste. |
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Data corrente: |
18/10/2007 |
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Data da última atualização: |
12/07/2021 |
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Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
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Autoria: |
SOUZA, J. R. T; IBELLI, A. M. G.; REGITANO, L. C. de A. |
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Afiliação: |
J. R. Souza - UNICEP; ADRIANA MÉRCIA G. IBELLI, UFSCar; LUCIANA CORREIA DE ALMEIDA REGITANO, CPPSE. |
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Título: |
Análise de métodos para a conservação de RNA. |
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Ano de publicação: |
2007 |
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Fonte/Imprenta: |
In: CONGRESSO BRASILEIRO DE GENÉTICA, 53., 2007, Águas de Lindóia, SP. Anais... Águas de Lindóia: SBG, 2007. |
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Páginas: |
p. 159 |
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Idioma: |
Português |
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Conteúdo: |
Amostras de RNA com elevado grau de pureza e integridade são necessárias em diversos métodos de análise da expressão gênica. Em virtude da possibilidade de degradação enzimática, métodos eficazes de extração e armazenamento dessas amostras são necessários. Existem hoje no mercado reagentes que permitem a extração e a purificação de RNA de diversas amostras, com rapidez e eficiência, pois contêm simultaneamente desnaturantes, como o isotiocianato de guanidina, que impedem a ação enzimática, e solventes orgânicos que isolam o RNA do DNA e das proteínas. O objetivo deste projeto foi comparar a qualidade e integridade de RNA extraídos a partir de tecidos armazenados em RNAlater. e de tecidos crioliofilizados, e testar diferentes métodos de armazenamento para conservação de RNA. Foram feitas quatro repetições, utilizando 1g de tecido intestinal de bovino de quatro animais diferentes. 500 mg de tecido foram divididos em duas partes iguais, uma foi mergulhada em 3mL de RNAlater. e mantida em freezer -20º C, e a outra, crioliofilizada e mantida em temperatura ambiente livre de umidade. O RNA foi extraído dos 500 mg restantes, sendo dividido em cinco alíquotas iguais que foram estocadas usando cinco diferentes condições de armazenamento: crioliofilização; solução fomazol. à -20ºC, solução formazol. à 4ºC, água tratada com dietilpirocarbonato (DEPC) em freezer -80ºC e etanol 75% em freezer -80ºC. Após 10 dias, o RNA dos tecidos armazenados em RNAlater. e crioliofilizados foi extraído. Os RNAs estocados foram ressuspendidos em 50µL de água DEPC. A quantidade foi avaliada por espectrofotometria e a qualidade dos RNAs foi observada em gel de agarose 1% corado com brometo de etídio (5 µg/ml). As amostras de RNA mostraram-se íntegras antes de serem submetidas à armazenamento, não sendo observada degradação no gel de agarose. As razões RNA:proteínas variaram de 1,79 a 1,98 indicando alto grau de pureza de RNA. No armazenamento do tecido em RNAlater. a leitura 260nm teve média de 0,409 com desvio padrão de 0,159 e a concentração, média de 1636ng/µL, com desvio padrão de 636,96. No armazenamento do tecido crioliofilizado, a leitura 260 teve média de 0,518 com desvio padrão de 0,1254 e a concentração média de 2073ng/µL com desvio padrão de 421,7. A comparação visual dos cinco diferentes métodos de armazenamento de RNA, observando-se a intensidade luminosa das bandas 18S e 28S em gel de agarose 1%, permitiu concluir que apenas as amostras armazenadas a -80ºC em solução aquosa sofreram degradação no período avaliado. As amostras liofilizadas e depois reidratadas em água livre de RNAse permaneceram íntegras, apresentando aspecto semelhante ao das amostras não liofilizadas, indicando que, além da utilização de agentes desnaturantes com o formazol. e o RNAlater., este pode ser um método utilizado na conservação de amostras de RNA. MenosAmostras de RNA com elevado grau de pureza e integridade são necessárias em diversos métodos de análise da expressão gênica. Em virtude da possibilidade de degradação enzimática, métodos eficazes de extração e armazenamento dessas amostras são necessários. Existem hoje no mercado reagentes que permitem a extração e a purificação de RNA de diversas amostras, com rapidez e eficiência, pois contêm simultaneamente desnaturantes, como o isotiocianato de guanidina, que impedem a ação enzimática, e solventes orgânicos que isolam o RNA do DNA e das proteínas. O objetivo deste projeto foi comparar a qualidade e integridade de RNA extraídos a partir de tecidos armazenados em RNAlater. e de tecidos crioliofilizados, e testar diferentes métodos de armazenamento para conservação de RNA. Foram feitas quatro repetições, utilizando 1g de tecido intestinal de bovino de quatro animais diferentes. 500 mg de tecido foram divididos em duas partes iguais, uma foi mergulhada em 3mL de RNAlater. e mantida em freezer -20º C, e a outra, crioliofilizada e mantida em temperatura ambiente livre de umidade. O RNA foi extraído dos 500 mg restantes, sendo dividido em cinco alíquotas iguais que foram estocadas usando cinco diferentes condições de armazenamento: crioliofilização; solução fomazol. à -20ºC, solução formazol. à 4ºC, água tratada com dietilpirocarbonato (DEPC) em freezer -80ºC e etanol 75% em freezer -80ºC. Após 10 dias, o RNA dos tecidos armazenados em RNAlater. e crioliofilizados foi extraído.... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Crioliofilização; Métodos de conservação. |
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Thesagro: |
RNA. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/CPPSE/17200/1/PROCILCAR2007.00174.PDF
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Marc: |
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520 $aAmostras de RNA com elevado grau de pureza e integridade são necessárias em diversos métodos de análise da expressão gênica. Em virtude da possibilidade de degradação enzimática, métodos eficazes de extração e armazenamento dessas amostras são necessários. Existem hoje no mercado reagentes que permitem a extração e a purificação de RNA de diversas amostras, com rapidez e eficiência, pois contêm simultaneamente desnaturantes, como o isotiocianato de guanidina, que impedem a ação enzimática, e solventes orgânicos que isolam o RNA do DNA e das proteínas. O objetivo deste projeto foi comparar a qualidade e integridade de RNA extraídos a partir de tecidos armazenados em RNAlater. e de tecidos crioliofilizados, e testar diferentes métodos de armazenamento para conservação de RNA. Foram feitas quatro repetições, utilizando 1g de tecido intestinal de bovino de quatro animais diferentes. 500 mg de tecido foram divididos em duas partes iguais, uma foi mergulhada em 3mL de RNAlater. e mantida em freezer -20º C, e a outra, crioliofilizada e mantida em temperatura ambiente livre de umidade. O RNA foi extraído dos 500 mg restantes, sendo dividido em cinco alíquotas iguais que foram estocadas usando cinco diferentes condições de armazenamento: crioliofilização; solução fomazol. à -20ºC, solução formazol. à 4ºC, água tratada com dietilpirocarbonato (DEPC) em freezer -80ºC e etanol 75% em freezer -80ºC. Após 10 dias, o RNA dos tecidos armazenados em RNAlater. e crioliofilizados foi extraído. Os RNAs estocados foram ressuspendidos em 50µL de água DEPC. A quantidade foi avaliada por espectrofotometria e a qualidade dos RNAs foi observada em gel de agarose 1% corado com brometo de etídio (5 µg/ml). As amostras de RNA mostraram-se íntegras antes de serem submetidas à armazenamento, não sendo observada degradação no gel de agarose. As razões RNA:proteínas variaram de 1,79 a 1,98 indicando alto grau de pureza de RNA. No armazenamento do tecido em RNAlater. a leitura 260nm teve média de 0,409 com desvio padrão de 0,159 e a concentração, média de 1636ng/µL, com desvio padrão de 636,96. No armazenamento do tecido crioliofilizado, a leitura 260 teve média de 0,518 com desvio padrão de 0,1254 e a concentração média de 2073ng/µL com desvio padrão de 421,7. A comparação visual dos cinco diferentes métodos de armazenamento de RNA, observando-se a intensidade luminosa das bandas 18S e 28S em gel de agarose 1%, permitiu concluir que apenas as amostras armazenadas a -80ºC em solução aquosa sofreram degradação no período avaliado. As amostras liofilizadas e depois reidratadas em água livre de RNAse permaneceram íntegras, apresentando aspecto semelhante ao das amostras não liofilizadas, indicando que, além da utilização de agentes desnaturantes com o formazol. e o RNAlater., este pode ser um método utilizado na conservação de amostras de RNA.
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Embrapa Pecuária Sudeste (CPPSE) |
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