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| Registros recuperados : 199 | |
| 11. |  | PEREIRA, A. A.; OLIVEIRA, A. C. B. de. Cultivares. In: SAKIYAMA, N. S.; PRIETO, H. E.; MARTINEZ, H. E. P.; TOMAZ, M. A.; BORÉM, A. (Org.). Café Arábica: do plantio à colheita. 1. ed. Viçosa: Editora UFV, 2015, v.1, p. 24-45.| Biblioteca(s): Embrapa Café. |
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| 12. | | MENNA, P.; PEREIRA, A. A.; BANGEL, E. V.; HUNGRIA, M. Rep-PCR of tropical rhizobia for strain fingerprinting, biodiversity appraisal and as a taxonomic and phylogenetic tool. Symbiosis, Philadelphia, v. 48, n. 1-3, p. 120-130, Feb. 2009.| Biblioteca(s): Embrapa Soja. |
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| 14. | | BARBOSA, I. de P.; OLIVEIRA, A. C. B. de; ROSADO, R. D. S.; SAKIYAMA, N. S.; CRUZ, C. D.; PEREIRA, A. A.; PEREIRA, A. A. Sensory quality of Coffea arabica L. genotypes influenced by postharvest processing. Crop Breeding and Applied Biotechnology, v. 19, n. 4, p. 428-435, 2019.| Biblioteca(s): Embrapa Café. |
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| 17. | | SANTOS, R. S.; SILVA, D. A. da; PEREIRA, A. A. A.; OLIVEIRA, L. C. de. Levantamento da entomofauna edáfica associada à mata ripária e sistema agroflorestal em Rio Branco, AC. Agrotrópica, Ilhéus, v. 28, n. 3, p. 277-284, 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| Registros recuperados : 199 | |
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 | Acesso ao texto completo restrito à biblioteca da Embrapa Soja. Para informações adicionais entre em contato com valeria.cardoso@embrapa.br. |
Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Soja. |
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Data corrente: |
22/12/2005 |
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Data da última atualização: |
22/12/2005 |
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Autoria: |
PEREIRA, A. A.; CAMPO, R. J.; FRANCHINI, J. C.; TORRES, E.; HUNGRIA, M. |
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Título: |
Diversidade de Rizóbios que nodulam a soja, Glycine max (L.) Merril, sob diferentes sistemas de manejo de solo. |
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Ano de publicação: |
2005 |
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Fonte/Imprenta: |
In: SEMANA DE BIOTECNOLOGIA, 1., 2005, Londrina. [Resumos]. Londrina: UEL, 2005. |
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Descrição Física: |
1 CD-ROM. |
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Idioma: |
Português |
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Notas: |
Resumos - Pdf. 9. |
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Conteúdo: |
A soja ocupa posição de destaque no Brasil e no Paraná e a viabilidade econômica da
cultura está diretamente relacionada ao processo de fixação biológica do N2 (FBN), em
que a simbiose com bactérias conhecidas coletivamente como Rizóbios conseguem suprir as necessidades da planta em nitrogênio (N). A FBN contribui para diminuir o uso de fontes energéticas não-renováveis necessárias para a síntese de fertilizantes nitrogenados, bem como para a menor poluição de lagos, rios e lençóis freáticos com nitrato e a menor emissão de gases com efeito estufa. O ensaio utilizado para este estudo vem sendo conduzido há dez anos na Fazenda Experimental da Embrapa Soja em Londrina, em delineamento experimental em blocos ao acaso, com quatro repetições, incluindo os tratamentos de plantio direto (PD) ou plantio convencional (PC), com sucessão das culturas soja e trigo (Triticum aestivum), ou rotação com diversas espécies: nabo forrageiro (Raphanus sativus)/milho (Zea mays)/aveia preta (Avena
trigosa)/soja/trigo/soja/trigo/soja. Nesse ensaio, foram coletados nódulos das raízes de dez plantas de soja por parcela, procedendo-se ao isolamento de rizóbios de 30 nódulos por parcela, escolhidos ao acaso. Após o isolamento, à purificação, à caracterização
morfológica e à estocagem dos rizóbios, procedeu-se à extração do DNA, segundo
Fernandes et al. (2003). O DNA foi amplificado pela técnica de PCR ("polymerase chain
reaction", reação em cadeia de polimerase) com o "primer" BOX-A1R, que amplifica
regiões repetitivas e conservadas do DNA normalmente no espaço intergênico, segundo
protocolo de Fernandes et al. (2003). O DNA também foi amplificado com "primers" para
a região do 16S rRNA, seguido pelo corte com três enzimas de restrição, utilizadas
individualmente, HpaII, HhaI e DdeI. Essa técnica é denominada de RFLP ("restriction
fragment lenght polymorphism", polimorfismo no comprimento de fragmentos de
restrição)-PCR e as análises foram conduzidas segundo Fernandes et al. (2003). Os perfis
de DNA amplificados foram submetidos à análise de agrupamento, usando o programa
Bionumerics (Applied Mathematics, Bélgica), verificando-se que houve variabilidade
genética em função do manejo do solo e das culturas. MenosA soja ocupa posição de destaque no Brasil e no Paraná e a viabilidade econômica da
cultura está diretamente relacionada ao processo de fixação biológica do N2 (FBN), em
que a simbiose com bactérias conhecidas coletivamente como Rizóbios conseguem suprir as necessidades da planta em nitrogênio (N). A FBN contribui para diminuir o uso de fontes energéticas não-renováveis necessárias para a síntese de fertilizantes nitrogenados, bem como para a menor poluição de lagos, rios e lençóis freáticos com nitrato e a menor emissão de gases com efeito estufa. O ensaio utilizado para este estudo vem sendo conduzido há dez anos na Fazenda Experimental da Embrapa Soja em Londrina, em delineamento experimental em blocos ao acaso, com quatro repetições, incluindo os tratamentos de plantio direto (PD) ou plantio convencional (PC), com sucessão das culturas soja e trigo (Triticum aestivum), ou rotação com diversas espécies: nabo forrageiro (Raphanus sativus)/milho (Zea mays)/aveia preta (Avena
trigosa)/soja/trigo/soja/trigo/soja. Nesse ensaio, foram coletados nódulos das raízes de dez plantas de soja por parcela, procedendo-se ao isolamento de rizóbios de 30 nódulos por parcela, escolhidos ao acaso. Após o isolamento, à purificação, à caracterização
morfológica e à estocagem dos rizóbios, procedeu-se à extração do DNA, segundo
Fernandes et al. (2003). O DNA foi amplificado pela técnica de PCR ("polymerase chain
reaction", reação em cadeia de polimerase) com o "primer" BOX-A1R, que amplifica
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520 $aA soja ocupa posição de destaque no Brasil e no Paraná e a viabilidade econômica da cultura está diretamente relacionada ao processo de fixação biológica do N2 (FBN), em que a simbiose com bactérias conhecidas coletivamente como Rizóbios conseguem suprir as necessidades da planta em nitrogênio (N). A FBN contribui para diminuir o uso de fontes energéticas não-renováveis necessárias para a síntese de fertilizantes nitrogenados, bem como para a menor poluição de lagos, rios e lençóis freáticos com nitrato e a menor emissão de gases com efeito estufa. O ensaio utilizado para este estudo vem sendo conduzido há dez anos na Fazenda Experimental da Embrapa Soja em Londrina, em delineamento experimental em blocos ao acaso, com quatro repetições, incluindo os tratamentos de plantio direto (PD) ou plantio convencional (PC), com sucessão das culturas soja e trigo (Triticum aestivum), ou rotação com diversas espécies: nabo forrageiro (Raphanus sativus)/milho (Zea mays)/aveia preta (Avena trigosa)/soja/trigo/soja/trigo/soja. Nesse ensaio, foram coletados nódulos das raízes de dez plantas de soja por parcela, procedendo-se ao isolamento de rizóbios de 30 nódulos por parcela, escolhidos ao acaso. Após o isolamento, à purificação, à caracterização morfológica e à estocagem dos rizóbios, procedeu-se à extração do DNA, segundo Fernandes et al. (2003). O DNA foi amplificado pela técnica de PCR ("polymerase chain reaction", reação em cadeia de polimerase) com o "primer" BOX-A1R, que amplifica regiões repetitivas e conservadas do DNA normalmente no espaço intergênico, segundo protocolo de Fernandes et al. (2003). O DNA também foi amplificado com "primers" para a região do 16S rRNA, seguido pelo corte com três enzimas de restrição, utilizadas individualmente, HpaII, HhaI e DdeI. Essa técnica é denominada de RFLP ("restriction fragment lenght polymorphism", polimorfismo no comprimento de fragmentos de restrição)-PCR e as análises foram conduzidas segundo Fernandes et al. (2003). Os perfis de DNA amplificados foram submetidos à análise de agrupamento, usando o programa Bionumerics (Applied Mathematics, Bélgica), verificando-se que houve variabilidade genética em função do manejo do solo e das culturas.
700 1 $aCAMPO, R. J.
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700 1 $aTORRES, E.
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773 $tIn: SEMANA DE BIOTECNOLOGIA, 1., 2005, Londrina. [Resumos]. Londrina: UEL, 2005.
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