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| Registros recuperados : 204 | |
| 141. |  | PEREIRA, E. S.; PRAÇA, L. B.; MARTINS, E. S.; SANTOS, A. C.; TELES, B. R.; PONTES, R. G. M. S. de. Larvas de Simuliidae susceptível a toxinas de Bacillus thuringiensis Berliner 1915. In: ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 15., 2010, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2010. Resumo 078. p. 117| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 143. | | SILVA, C. R. C.; MONNERAT, R.; LIMA, L. M. de; MARTINS, E. S.; MELO FILHO, P. A.; PINHEIRO, M. P. N.; SANTOS, R. C. Stable integration and expression of a cry1la gene conferring resistance to fall armyworm and boll weevil in cotton plants. Pest Management Science, v. 72, p. 1549-1557, 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 144. | | MONNERAT, R. G.; SOARES, C. M.; CAPDEVILLE, G.; JONES, G.; MARTINS, E. S.; PRAÇA, L.; CORDEIRO, B. A.; BRAZ, S. V.; SANTOS, R. C. dos; BERRY, C. Translocation and insecticidal activity of bacillus thuringiensis living inside of plants. Microbial Biotechnology, v. 2, n. 4, p. 512-520, 2009.| Biblioteca(s): Embrapa Algodão. |
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| 145. | | BERÇOT, M. R.; QUEIROZ, P. R. M.; GRYNBERG, P.; TOGAWA, R. C.; MARTINS, E. S.; ROCHA, G. T.; MONNERAT, R. G. Distribution and genetic diversity of genes from Brazilian Bacillus thuringiensis strains toxic to agricultural insect pests revealed by real-time PCR. Microbial Ecology, v. 86, 2515-2526, 2023. Na publicação: Roberto Togawa.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 146. | | MONNERAT, R. G.; SOARES, C. M.; ROBERG, R. A.; DUMAS, V. F.; RAMOS, F. R.; PRAÇA, L. B.; MARTINS, E. S.; QUEIROZ, P. R.; SUJII, E. R. Bt-horus, um biolarvicida à base da Bacillus thuringiensis para controle de larvas de Aedes aegypti. Brasília: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2008. 16 p. (Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 220).| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 147. | | DUMAS, V. F.; GOLDENBERG, C. doa S.; MARTINS, E. S.; PRACA, L. B.; QUEIROZ, P. R.; PONTES, R. G. M. S. de; MELO, F. R. Chitinase and cellulase activity from Bacillus thuringiensis strains. Universitas: Ciências da Saúde, Brasília, v.7, n. 1, p. 1-12, 2009.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 148. | | PRACA, L. B.; CAIXETA, C. F.; JUSTEN, F.; GOMES, A. C. M. M.; MARTINS, E. S.; SUJII, E. R.; PONTES, R. G. M. S. de. Colonização endofítica de plantas de repolho por estirpes brasileiras de Bacillus thuringiensis. In: SIMPÓSIO DE CONTROLE BIOLÓGICO, 13., 2013, Bonito, MS. Faça bonito: use controle biológico: anais. Brasília, DF: Embrapa, 2013.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 149. | | MARTINS, E. S.; PRAÇA, L. B.; DUMAS, V. F.; SILVA-WERNECK, J. O.; SONE, E. H.; WAGA, I. C.; BERRY, C.; MONNERAT, R. G. Characterization of Bacillus thuringiensis isolates toxic to cotton boll weevil (Anthonomus grandis). Biological Control, v. 40, p. 65-68, 2007.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 150. | | MARTINS, E. S.; SONE, E. H.; PRAÇA, L. B.; DUMAS, V. F.; WAGA, I. C.; GOMES, A. C. M. M.; MONNERAT, R. G. Investigação da atividade e caracterização bioquímica e molecular de estirpes de Bacillus thuringiensis tóxicas ao bicudo do algodoeiro (Anthonomus grandis Boheman, 1983). In: ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 9., 2004, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2004. p. 142.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 151. | | GROCHOCKI, T. M.; SUJII, E. R.; TOGNI, P. H. B.; CAVALCANTE, K. R.; MARTINS, E. S.; QUEIROZ, P. R.; PONTES, R. G. M. S. de. Metodologia de detecção de DNA de Bemisia tabaci em inseto predador por meio de marcadores moleculares SCAR. In: ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 14., 2009, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2009. Resumo 082. p. 123| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 152. | | MARRIEL, I. E.; RESENDE, A. V. de; MARTINS, E. S.; COELHO, A. M.; OLIVEIRA, A. C.; MAGALHAES, P. C.; ALVES, V. M. C.; CARVALHO, E. A. Papel de microrganismos sobre o aproveitamento de rochas silicáticas como fontes alternativas de nutrientes In: SIMPÓSIO SOBRE INOVAÇÃO E CRIATIVIDADE CIENTÍFICA NA EMBRAPA, 1., 2008, Brasília, DF. Resumos... Brasília, DF: Embrapa, 2008.| Biblioteca(s): Embrapa Milho e Sorgo. |
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| 153. | | PEREIRA, E. S.; PRACA, L. B.; SANTOS, A. C. dos; MARTINS, E. S.; TELES, B. R.; PONTES, R. G. M. S. de. Novas estirpes de Bacillus thuringiensis berliner patogênicas à larvas de Simuliidae (INSETA: DIPTERA). In: CONGRESSO BRASILEIRO DE ENTOMOLOGIA, 23., 2010, Natal, RN. Anais... Natal: Sociedade Brasileira de Entomologia, 2010. 1 CD-ROM| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 154. | | PEREIRA, E. S.; PRACA, L. B.; SANTOS, A. C.; MARTINS, E. S.; GONÇALVES, J. C.; TELES, B. R.; PONTES, R. G. M. S. de. Obtenção de novas estirpes de Bacillus thuringiensis Berliner patogênicas a larvas de Simuliidae (Insecta: Diptera). In: ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 14., 2009, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2009. Resumo 083. p. 123| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 155. | | CORREIA, J. R.; MEIRELLES, M. L.; SIMM, K. M. C. B.; MARTINS, E. S.; BRAGA, A. R. S.; SPERA, S. T. Ocorrencia de especies vegetais de cerrado em diferentes classes de solos em uma topossequencia na Reserva Ecologica de Aguas Emendadas (Planaltina; DF). In: CONGRESSO DE ECOLOGIA DO BRASIL, 4., 1998, Belem, PA. Ecossistema : com enfoque no contexto de seus componentes basicos: resumos. Belem: Faculdade de Ciencias Agrarias do Para, 1998. p. 357.| Biblioteca(s): Embrapa Cerrados. |
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| 156. | | NAME, J. V. F.; QUEIROZ, P. R. M.; MARTINS, E. S.; SALLET L. A. P.; PONTES, R. G. M. S. de; SUJII, E. R. Detecção de Bemisia tabaci exposta a diferentes tratamentos utilizando marcadores SCAR. In: ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 15., 2010, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2010. Resumo 067. p. 106| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 157. | | LIMA, G. M. S.; AGUIAR, R. W. S.; MARTINS, E. S.; GOMES, A. C. M.; MONNERAT, R. G.; RIBEIRO, B. M. Expressão em células de inseto da proteína Cry2Aa de Bacillus thuringiensis tóxica para larvas de Anticarsia gemmatalis. In : ENCONTRO DO TALENTO ESTUDANTIL DA EMBRAPA RECURSOS GENÉTICOS E BIOTECNOLOGIA, 12., 2007, Brasília, DF. Anais: resumos dos trabalhos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2007. p. 131.| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 158. | | SANTOS, R. C. dos; SILVA, C. R. C. da; LIMA, L. M. de; MELO FILHO, P. de A.; MARTINS, E. S.; RAMOS, A. R.; GOMES, R. M. S. Expressão do gene CRY1/A em plantas t0 de algodão oriundas da cv. BRS Antares por meio da técnica de microinjeção no ovário. In: CONGRESSO BRASILEIRO DO ALGODÃO, 7., 2009, Foz do Iguaçu. Sustentabilidade da cotonicultura brasileira e expansão dos mercados: anais. Campina Grande: Embrapa Algodão, 2009. 1 CD-ROM| Biblioteca(s): Embrapa Algodão. |
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| 159. | | MARTINS, E. S.; AGUIAR, R. W. S.; LIMA, G. M. S.; CORRÊA, R. F.; FERNANDEZ, R. S.; RIBEIRO, B. M.; MONNERAT, R. G. Expressão de proteínas Cry em células de inseto. In: SIMPÓSIO DE CONTROLE BIOLÓGICO, 10., 2007, Brasília, DF. Inovar para preservar a vida. Resumos. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2007. (Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Documentos, 250). Palestra| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| 160. | | MARTINS, E. S.; PRAÇA, L. B.; DUMAS, V. F.; SONE, E. H.; WAGA, I. C.; GOMES, A. C. M. M.; FALCÃO, R.; MONNERAT, R. G. Estudo da atividade e caracterização bioquímica e molecular de estirpes de Bacillus thuringiensis tóxicas ao bicudo do algodoeiro (Anthonomus grandis Boheman, 1983). Brasília: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia, 2005. 19 p. (Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 83)| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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| Registros recuperados : 204 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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Data corrente: |
06/03/2017 |
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Data da última atualização: |
14/06/2024 |
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Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
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Autoria: |
SANTOS, R. C. dos; SILVA, C. R. C. da; SOARES, T. da C; CAVALCANTI, J. J. V.; LIMA, L. M. de; MARTINS, E. S.; MONNERAT, R. |
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Afiliação: |
ROSEANE CAVALCANTI DOS SANTOS, CNPA; CARLIANE REBECA COELHO da SILVA, UFRPE; TAÍZA da CUNHA SOARES, UFRPE; JOSE JAIME VASCONCELOS CAVALCANTI, CNPA; LIZIANE MARIA DE LIMA, CNPA; ÉRICA SOARES MARTINS, Cenargen; ROSE GOMES MONNERAT SOLON DE PONTES, Cenargen. |
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Título: |
Relative expression of CRy10 in GM cotton lines resistant to boll weevil. |
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Ano de publicação: |
2016 |
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Fonte/Imprenta: |
In: ENCONTRO DE GENÉTICA DO NORDESTE, 21., 2016, Recife. Anais... Ribeirão Preto: SBG; Recife: UFPE: UFRPE: UPE, 2016. p. 87. |
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Idioma: |
Inglês |
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Conteúdo: |
Boll weevil (Anthonomus grandis) is a serious pest of cotton crop in several parts of world. The control is done by synthetic pesticides that increase the management costs. Embrapa coordinates an important research involving development of GM cotton resistant to boll weevil, by genetic transformation. Seven line (T0-8H) containing a Btcry 10 have been identified by feeding bioassays and ELISA, which showed reasonable toxicity against adult boll weevils. In this work, these lines were used in order to estimate the presence and relative expression of cry 10 by PCR and RT-qPCR, respectively, from young buds of 50d-plants. RT-qPCR assays were performed, by using Syber Green Rox Plus Master Mix 2X (LGC). Three endogenous cotton gene (GhACT, GhUBQ14 and GhPP2A) were used as a standard control. At first, 95°C/15 min and 40 cycles of 95°C/ 20 sec, 60°C/ 20 sec and 72°C/ 20 sec. Then, a curve of denaturation (melting curve) was performed after conclusion of amplification, at 95°C/15 sec, 60°C/15 sec, rising 2°/min until reaching 95°C. All reactions were carried out with experimental and biological replications. The threshold cycle (Ct) and PCR efficiency was estimated by Real-time PCR Miner program. The analyses were performed by using qBASEPlus program. Graphics, Cqs and Melt curve were automatically generated, based on the normalization method with a reference gene, ??Cq. Varied levels of expression were found in GM lines, too low in 8H-269 and 8H-357, mid in 8H-282 and 8H-346 and high in 8H- 336 (14x). These data agreed with previous results obtained by ELISA assays. Eleven lines derivate from 8H-336 (T1) were analyzed by PCR assays with genomic DNA, using 2 primer combinations. More than 50% showed amplicons confirming the presence of gene in selected lines. Taking in account that a reasonable level of resistance should overcoming 2 ug of protein/g tissue, we suggested that 8H-366 is the best genotype for control the cotton boll weevil. This material will be further advanced for entomological assays with larvae and adults of boll weevil. MenosBoll weevil (Anthonomus grandis) is a serious pest of cotton crop in several parts of world. The control is done by synthetic pesticides that increase the management costs. Embrapa coordinates an important research involving development of GM cotton resistant to boll weevil, by genetic transformation. Seven line (T0-8H) containing a Btcry 10 have been identified by feeding bioassays and ELISA, which showed reasonable toxicity against adult boll weevils. In this work, these lines were used in order to estimate the presence and relative expression of cry 10 by PCR and RT-qPCR, respectively, from young buds of 50d-plants. RT-qPCR assays were performed, by using Syber Green Rox Plus Master Mix 2X (LGC). Three endogenous cotton gene (GhACT, GhUBQ14 and GhPP2A) were used as a standard control. At first, 95°C/15 min and 40 cycles of 95°C/ 20 sec, 60°C/ 20 sec and 72°C/ 20 sec. Then, a curve of denaturation (melting curve) was performed after conclusion of amplification, at 95°C/15 sec, 60°C/15 sec, rising 2°/min until reaching 95°C. All reactions were carried out with experimental and biological replications. The threshold cycle (Ct) and PCR efficiency was estimated by Real-time PCR Miner program. The analyses were performed by using qBASEPlus program. Graphics, Cqs and Melt curve were automatically generated, based on the normalization method with a reference gene, ??Cq. Varied levels of expression were found in GM lines, too low in 8H-269 and 8H-357, mid in 8H-282 and 8H-346 and ... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Boll weevil. |
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Thesagro: |
Algodão; Anthonomus Grandis; Bicudo. |
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Thesaurus NAL: |
Cotton. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/157044/1/Relative-expression-of-Cry10.pdf
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Marc: |
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520 $aBoll weevil (Anthonomus grandis) is a serious pest of cotton crop in several parts of world. The control is done by synthetic pesticides that increase the management costs. Embrapa coordinates an important research involving development of GM cotton resistant to boll weevil, by genetic transformation. Seven line (T0-8H) containing a Btcry 10 have been identified by feeding bioassays and ELISA, which showed reasonable toxicity against adult boll weevils. In this work, these lines were used in order to estimate the presence and relative expression of cry 10 by PCR and RT-qPCR, respectively, from young buds of 50d-plants. RT-qPCR assays were performed, by using Syber Green Rox Plus Master Mix 2X (LGC). Three endogenous cotton gene (GhACT, GhUBQ14 and GhPP2A) were used as a standard control. At first, 95°C/15 min and 40 cycles of 95°C/ 20 sec, 60°C/ 20 sec and 72°C/ 20 sec. Then, a curve of denaturation (melting curve) was performed after conclusion of amplification, at 95°C/15 sec, 60°C/15 sec, rising 2°/min until reaching 95°C. All reactions were carried out with experimental and biological replications. The threshold cycle (Ct) and PCR efficiency was estimated by Real-time PCR Miner program. The analyses were performed by using qBASEPlus program. Graphics, Cqs and Melt curve were automatically generated, based on the normalization method with a reference gene, ??Cq. Varied levels of expression were found in GM lines, too low in 8H-269 and 8H-357, mid in 8H-282 and 8H-346 and high in 8H- 336 (14x). These data agreed with previous results obtained by ELISA assays. Eleven lines derivate from 8H-336 (T1) were analyzed by PCR assays with genomic DNA, using 2 primer combinations. More than 50% showed amplicons confirming the presence of gene in selected lines. Taking in account that a reasonable level of resistance should overcoming 2 ug of protein/g tissue, we suggested that 8H-366 is the best genotype for control the cotton boll weevil. This material will be further advanced for entomological assays with larvae and adults of boll weevil.
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Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia (CENARGEN) |
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