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| Registros recuperados : 71 | |
| 42. |  | ARANTES, A. F. B.; BRAGA, H. C. A.; MENDES, T. D.; SIQUEIRA, F. G. de; BRASIL, B. dos S. A. F. Avaliação da atividade enzimática de biofábricas produtoras de Beta-glicosidases baseadas em microalgas. In: ENCONTRO DE PESQUISA E INOVAÇÃO DA EMBRAPA AGROENERGIA, 2., 2015, Brasília, DF. Anais ... Brasília, DF: Embrapa Agroenergia, 2015. p. 11-12.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 44. | | CEREIJO, C. R.; SANTANA, H.; HADI, S. I. I. A.; GARCIA, L. C.; JUNGMANN, L.; BRASIL, B. dos S. A. F. Avaliação prospectiva do potencial biotecnológico de microalgas: uma abordagem filogenética. In: ENCONTRO DE PESQUISA E INOVAÇÃO DA EMBRAPA AGROENERGIA, 4.,2017, Brasília, DF. Anais... Brasília, DF: Embrapa, 2017. p. 73-79.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 46. | | RIBEIRO, D. M.; NASCIMENTO, R. C. do; CEREIJO, C. R.; SANTANA, H.; GARCIA, L. C.; BRASIL, B. dos S. A. F. Caracterização da composição química da biomassa da microalga Chlamydomonas biconvexa cultivada em efluente da indústria de óleo de palma. In: ENCONTRO DE PESQUISA E INOVAÇÃO DA EMBRAPA AGROENERGIA, 4.,2017, Brasília, DF. Anais... Brasília, DF: Embrapa, 2017. p. 80-87.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 47. | | RIBEIRO, D. M.; S. JUNIOR, P. L. D.; TELES, V. C.; SOARES, I. P.; GARCIA, L. C.; ABREU, P. C. V.; BRASIL, B. dos S. A. F. Caracterização da composição química da biomassa da microalga Nannochloropsis oculata cultivada em tanque aberto tipo raceway. In: ENCONTRO DE PESQUISA E INOVAÇÃO DA EMBRAPA AGROENERGIA, 3., 2016, Brasília, DF. Anais ... Brasília, DF: Embrapa, 2016. p. 123-129.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 48. | | TELES, V. C.; OLIVEIRA, A. F. P.; TELES, E. C.; SOARES, I. P.; CAMPANHA, R. B.; BRASIL, B. dos S. A. F. Caracterização de biomassa da nova espécie de microalga verde Micratinuim sp.Embrapa|LBA32 quando cultivada em meio à base vinhaça utilizando fotobiorreatores In: CONGRESSO BRASILEIRO DE QUÍMICA, 55., 2015, Goiânia. Recursos renováveis: inovação e tecnologia. Rio de Janeiro: ABQ, 2015.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 50. | | NETO, C. B. S.; BONFIM, C. A.; VALE, H. M. M.; ALCANTARA, L. M.; BRASIL, B. dos S. A. F.; FILHO, E. X. F.; SIQUEIRA, F. G. de. Holocellulase from filamentous fungi grown in culture media containing cassava wastewater. In: SYMPOSIUM ON BIOTECHNOLOGY FOR FUELS AND CHEMICALS, 36., 2014, Flórida. Abstracts... Fairfax: Society for Industrial Microbiology and Biotechnology, 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 53. | | SANTOS, L. L.; SALGADO, J. A.; DRUMMOND, M. G.; BASTIANETTO, E.; SANTOS, C. P.; BRASIL, B. dos S. A. F.; TACONELI, C. A.; OLIVEIRA, D. A. A. Molecular method for the semiquantitative identification of gastrointestinal nematodes in domestic ruminants. Parasitology Research, v. 119, p. 529-543, Feb. 2020.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 54. | | RIBEIRO, D. M.; GARCIA, L. C.; JUNGMANN, L.; WILLIAMS, T. C. R.; RONCARATTI, L. F.; BRASIL, B. dos S. A. F. Produção de biomassa algal: uma abordagem econômica e bioquímica integrada. In: ENCONTRO DE PESQUISA E INOVAÇÃO DA EMBRAPA AGROENERGIA, 5., 2018, Brasília, DF. Anais ... Brasília, DF: Embrapa Agroenergia, 2018. p. 12.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 55. | | RIBEIRO, D. M.; GARCIA, L. C.; JUNGMANN, L.; WILLIAMS, T. C. R.; RONCARATTI, L. F.; BRASIL, B. dos S. A. F. Potencial para produção de biodiesel de algas verdes da ordem Chlorellales cultivadas em meio de baixo custo Blue Green Nitrogen Mix (BGNIM). In: CONGRESSO DA REDE BRASILEIRA DE TECNOLOGIA E INOVAÇÃO DE BIODIESEL, 7., 2019, Florianópolis. Empreendedorismo e inovação: construindo um futuro competitivo para o biodiesel: anais. Florianópolis, SC: Rede Brasileira de Tecnologia e Inovação De Biodiesel, 2019. 523-524| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 56. | | SANTANA, H.; CEREIJO, C. R.; BRUNALE, P. P. de M.; FERNANDES, M.; HADI, S. I. I. A.; SIQUEIRA, F. G. de; BRASIL, B. dos S. A. F. Sugarcane vinasse as alternative medium for microalgae cultivation In: LATIN AMERICAN CONGRESS, 4., 2015, Florianópolis. Anais. Florianópolis: UFSC, 2015.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 57. | | PALHARES, M. R.; DRUMMOND, M. G.; BRASIL, B. dos S. A. F.; KRETTLI, A. U.; OLIVEIRA, G. C.; BRANDÃO, M. G. L. The use of an integrated molecular -, chemical - and biological-based approach for promoting the better use and conservation of medicinal species: A case study of Brazilian quinas. Journal of Ethnopharmacology, v. 155, n. 1 , p. 815-822, 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| 59. | | HADI, S. I. I. A; SANTANA, H.; BRUNALE, P. P. M.; GOMES, T. G.; OLIVEIRA, M. D. de; MATTHIENSEN, A.; OLIVEIRA, M. E. C.; SILVA, F. C. P.; BRASIL, B. dos S. A. F. DNA barcoding green microalgae isolated from neotropical inland waters. Plos One, v. 11, n. 2, Feb. 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia; Embrapa Amazônia Oriental; Embrapa Pantanal; Embrapa Suínos e Aves. |
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| 60. | | HADI, S. I. I. A.; SANTANA, H.; BRUNALE, P. P. de M.; GOMES, T. G.; OLIVEIRA, M. D. de; MATTHIENSEN, A.; OLIVEIRA, M. E. C.; SILVA, F. C. P.; BRASIL, B. dos S. A. F. DNA barcoding of microalgae using rbcL and nuITS2 markers reveals putative new species. In: ENCONTRO DE PESQUISA E INOVAÇÃO DA EMBRAPA AGROENERGIA, 2., 2015, Brasília, DF. Anais ... Brasília, DF: Embrapa Agroenergia, 2015. p. 92-94| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia. |
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| Registros recuperados : 71 | |
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 | Acesso ao texto completo restrito à biblioteca da Embrapa Agroenergia. Para informações adicionais entre em contato com cnpae.biblioteca@embrapa.br. |
Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Agroenergia. |
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Data corrente: |
15/03/2019 |
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Data da última atualização: |
18/11/2019 |
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Tipo da produção científica: |
Artigo em Periódico Indexado |
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Circulação/Nível: |
A - 1 |
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Autoria: |
FERNANDES, M. S.; GARCIA, L. C.; NASCIMENTO, R. C.; SANTANA, H.; MORAIS, P. B.; CAPDEVILLE, G. de; BRASIL, B. dos S. A. F. |
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Afiliação: |
Maiara S. Fernandes; LORENA COSTA GARCIA CALSING, CNPAE; Rodrigo C. Nascimento; Hugo Santana; Priscila B. Morais; GUY DE CAPDEVILLE, CNPAE; BRUNO DOS SANTOS A F BRASIL, SPD. |
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Título: |
Customized cryopreservation protocols for chlorophytes based on cell morphology. |
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Ano de publicação: |
2019 |
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Fonte/Imprenta: |
Algal Research, v. 38, 2019. |
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Idioma: |
Português |
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Conteúdo: |
The development of efficient algae cryopreservation methods is pivotal to the establishment of long-term culture collections as well as algae breeding and genetic modification programs. However, the unpredictable responses of distinct algal species to cryopreservation agents and protocols have hampered the standardization of universal methods so far. The results presented in this study indicate that intrinsic biological factors (i.e.: cell morphology and phylogenetic origin) play a role in the definition of which culture age and cryoprotectant agent type and concentration should be used to achieve successful cryopreservation. Through the use of Central Composite Rotatable Design (CCRD) it was possible to define optimized protocols for cryopreserving three major morphotypic groups found among chlorophytes (i.e.: coenobium, coccoid or palmella forming strains). These optimized protocols were then validated upon fifteen strains from Sphaeropleales, Chlamydomonadales and Chlorelalles clades. Analysis reveals that the use of DMSO as the sole cryoprotectant provided the highest postfreezing cell viability recovery rates for 80% of the coccoid strains tested, while the combination of glycerol and PEG400 allowed efficient cryopreservation of 100% of the coenobium and palmella forming strains evaluated. In addition, results suggest that coenobium-forming strains have higher resistance to freeze/thawing when frozen at mid-log phase of growth, while coccoid and plamelloid strains present higher survival rates when cryopreserved at late-log phase. Such information is of valuable practical use since a simple visual inspection of algae strain's predominant morphotype can guide the choice of the most suitable cryopreservation protocol. MenosThe development of efficient algae cryopreservation methods is pivotal to the establishment of long-term culture collections as well as algae breeding and genetic modification programs. However, the unpredictable responses of distinct algal species to cryopreservation agents and protocols have hampered the standardization of universal methods so far. The results presented in this study indicate that intrinsic biological factors (i.e.: cell morphology and phylogenetic origin) play a role in the definition of which culture age and cryoprotectant agent type and concentration should be used to achieve successful cryopreservation. Through the use of Central Composite Rotatable Design (CCRD) it was possible to define optimized protocols for cryopreserving three major morphotypic groups found among chlorophytes (i.e.: coenobium, coccoid or palmella forming strains). These optimized protocols were then validated upon fifteen strains from Sphaeropleales, Chlamydomonadales and Chlorelalles clades. Analysis reveals that the use of DMSO as the sole cryoprotectant provided the highest postfreezing cell viability recovery rates for 80% of the coccoid strains tested, while the combination of glycerol and PEG400 allowed efficient cryopreservation of 100% of the coenobium and palmella forming strains evaluated. In addition, results suggest that coenobium-forming strains have higher resistance to freeze/thawing when frozen at mid-log phase of growth, while coccoid and plamelloid strains prese... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Central composite rotational design; Morphotype. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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Marc: |
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245 $aCustomized cryopreservation protocols for chlorophytes based on cell morphology.$h[electronic resource]
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520 $aThe development of efficient algae cryopreservation methods is pivotal to the establishment of long-term culture collections as well as algae breeding and genetic modification programs. However, the unpredictable responses of distinct algal species to cryopreservation agents and protocols have hampered the standardization of universal methods so far. The results presented in this study indicate that intrinsic biological factors (i.e.: cell morphology and phylogenetic origin) play a role in the definition of which culture age and cryoprotectant agent type and concentration should be used to achieve successful cryopreservation. Through the use of Central Composite Rotatable Design (CCRD) it was possible to define optimized protocols for cryopreserving three major morphotypic groups found among chlorophytes (i.e.: coenobium, coccoid or palmella forming strains). These optimized protocols were then validated upon fifteen strains from Sphaeropleales, Chlamydomonadales and Chlorelalles clades. Analysis reveals that the use of DMSO as the sole cryoprotectant provided the highest postfreezing cell viability recovery rates for 80% of the coccoid strains tested, while the combination of glycerol and PEG400 allowed efficient cryopreservation of 100% of the coenobium and palmella forming strains evaluated. In addition, results suggest that coenobium-forming strains have higher resistance to freeze/thawing when frozen at mid-log phase of growth, while coccoid and plamelloid strains present higher survival rates when cryopreserved at late-log phase. Such information is of valuable practical use since a simple visual inspection of algae strain's predominant morphotype can guide the choice of the most suitable cryopreservation protocol.
653 $aCentral composite rotational design
653 $aMorphotype
700 1 $aGARCIA, L. C.
700 1 $aNASCIMENTO, R. C.
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700 1 $aBRASIL, B. dos S. A. F.
773 $tAlgal Research$gv. 38, 2019.
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Embrapa Agroenergia (CNPAE) |
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