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| Registros recuperados : 265 | |
| 81. |  | OLIVEIRA, M. E. F.; RIBEIRO, I. F.; RODRIGUEZ, M. G. K.; MACIEL, G. S.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z.; BARTLEWSKI, P. M. Assessing the usefulness of B-mode and colour Doppler sonography, and measurements of circulating progesterone concentrations for determining ovarian responses in superovulated ewes. Reproduction in Domestic Animals, v. 53, n. 3, p. 742-750, Jun. 2018.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 82. | | NASCIMENTO, P. M. P.; BRANDÃO, F. Z.; PEREIRA, P. F. V.; PONTELLO, V. R.; OLIVEIRA, A. P.; BRUSKI, J. H.; FICHER NETO, A.; FONSECA, J. F. da. Avaliação de protocolos hormonais de seis, nove e doze dias sobre o estro, ovulação e fertilidade de cabras da raça Toggenburg em anestro. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE MEDICINA VETERINÁRIA, 35.; ENCONTRO DE SAÚDE VETERINÁRIA DO CONESUL, 1.; CONGRESSO ESTADUAL DE MEDICINA VETERINÁRIA, 17.; CONGRESSO ESTADUAL DA ANCLIVEPA/RS, 3.; CONGRESSO DE MÉDICOS VETERINÁRIOS DO CONESUL, 5., 2008, Gramado. Anais... Gramado: Sociedade Brasileira de Medicina Veterinária, 2008. 5 f.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 83. | | MOURA, A. B. B.; PANTOJA, M. H. A.; ROMANELLO, N.; LEMES, A. P.; ESTEVES, S. N.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z.; GARCIA, A. R. Correlations between testicular surface temperatures measured by infrared thermography and seminal parameters in rams of distinct genotypic groups. Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 560, Jul./Sept. 2016. Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain,...| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 84. | | GHETTI, A. M.; BRANDAO, F. Z.; SIQUEIRA, L. G. B.; AREAS, V. S.; ARASHIRO, E. K. N.; FERNANDES, C. A. C.; PALHAO, M. P.; VIANA, J. H. M. Comparação dos metodos e subjetivo de avaliação do padrão vascular do foliculo pre-ovulatorio utilizando-se Doppler colorido. In: REUNIÃO ANUAL DA SOCIEDADE BRASILEIRA DE TECNOLOGIA DE EMBRIÕES, 26., 2012, Foz do Iguaçu. Anais. Belo Horizonte: CBRA, 2012. p. 478.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 85. | | OLIVARES, C. C. S.; FONSECA, J. F. da; CAMARGO, L. S. de A.; FABJAN, J. M. G. de S.; RODRIGUES, A. L. R.; BRANDÃO, F. Z. Comparison of different methods of goat sperm selection and capacitation for optimization of assisted reproductive technologies. Small Ruminant Research, Amsterdam, v. 127, p. 44-49, June, 2015.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos; Embrapa Gado de Leite. |
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| 86. | | ARASHIRO, E. K. N.; VIANA, J. H. M.; FONSECA, J. F. da; CAMARGO, L. S. de A.; FERNANDES, C. A. de C.; BRANDÃO, F. Z. Luteal dynamics in goats: morphological and endocrine features. Revista Brasileira de Zootecnia, v. 39, n. 9, p. 1937-1942, 2010.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos; Embrapa Gado de Leite. |
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| 88. | | ARASHIRO, E. K. N.; PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; RIBEIRO, L. S.; BALARO, M. F. A.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. Luteal vascularization as a tool for early pregnancy diagnosis in sheep is more efficient from day 17 post-insemination. Animal Reprodroduction, v. 14, n. 3, p. 728, Jul./Sept. 2017. Proceedings of the 31st Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Cabo de Santo Agostinho, PE, Brazil, August 17th to 19th, 2017. Abstracts| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 89. | | BRARTZ, C.; BRANDÃO, F. Z.; LOBO, R. N. B.; FACO, O.; VILLELA, L. C. V.; COUTO, J. F.; FONSECA, J. F. da. Influência da utilização do GnRH no momento da inseminação artifical sobre a fertilidade de cabras. Acta Scientiae Veterinariae, Porto Alegre, v. 35, p. s1106, 2007. Suplemento 3. Edição dos anais da 21o. Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Tecnologia de Embriões - SBTE, Salvador, 2007.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 90. | | TEIXEIRA, T. A.; FONSECA, J. F. da; CARVALHEIRA, L. R.; SARZEDAS, A. C.; CONSALTER, A.; DELGADO, K. F.; BRANDÃO, F. Z.; VASCONCELOS, C. O. P. Influence or duration of treatment with medroxyprogesterone acetate sponge on reproductive parameters of Santa Inês ewes subjected to estrus synchronization. Animal Reproduction, v. 11, n. 3, Jul./Sept. 2014. Abstract A116. Proceedings of the 28th Annual Meeting of The Brazilian Embryo Technology Society - SBTE, Natal, RN, Brasil, ago. 2014.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 91. | | BALARO, M. F. A.; FONSECA, J. F. da; MAIA, A. L. R. S.; DELGADO, K. F.; FERREIRA, M. I. C.; BRANDÃO, F. Z. Protocolos hormonais de indução de estro sincronizado em ovelhas leiteiras na contra estação reprodutiva. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL, 20., 2013, Uberlandia. Anais... Belo Horizonte: CBRA, 2013. p. 81.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 92. | | SOUZA, J. M. G.; TORRES, C. A. A.; MAIA, A. L. R. S.; BRUSCHI, J. H.; BRANDÃO, F. Z.; VIANA, J. H. M.; FONSECA, J. F. da. Plasma progesterone concentrations in Toggenburg goats submitted to estrous induction reusing intravaginal autoclaved progesterone devices. In: INTERNATIONAL CONFERENCE ON GOATS, 10., 2010, Recife. Technological development and associative attempts to a sustainable small livestock production: annals. Little Rock: IGA, 2010. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 93. | | BRANDÃO, F. Z.; SOUZA, J. M. G.; TORRES, C. A. A.; MAIA, A. L. R. S.; DENADAI, R.; OBA, E.; FONSECA, J. F. da. Plasma progesterone concentrations in Toggenburg goats submitted to estrous synchronization reusing autoclaved intravaginal progesterone devices. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL, 19., 2011, Recife. Anais... Belo Horizonte: CBRA, 2011. p. 212. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 94. | | BALARO, M. F. A.; BRANDÃO, F. Z.; MAIA, A. L. R. S.; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; CUETO, M. I.; GIBBONS, A. E.; FONSECA, J. F. da. Pre-selection test to identify high responder donor goats. Reproduction in Domestic Animals, Berlin, v. 51, n. 3, p. 386-391, Jun. 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 95. | | NASCIMENTO, P. M. P.; BRANDÃO, F. Z.; PEREIRA, P. F. V.; OLIVEIRA, A. P.; VIANA, J. H. M.; FONSECA, J. da F. Preovulatory follicle dynamics in Toggenburg goats after treatment with intravaginal implants of progesterone for 6, 9 or 12 days. Animal Reproduction, v. 6, n. 1, p. 226, Jan./Mar. 2009. Edição dos Abstracts do II International Symposium on animal Biology or Reproduction, São Paulo, nov. 2008.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 96. | | NASCIMENTO, P. M. P.; OLIVEIRA, A. P.; LEITE, R. C.; BRANDÃO, F. Z.; BRUSCHI, J. H.; SOUZA, J. M. G. de; FONSECA, J. F. da. Pregnancy rate in Toggenburg goats after short, medium or long-term protocols for induction of synchronized estrus after natural mating or artificial insemination in different seasons. Acta Scientiae Veterinariae, Porto Alegre, v. 38, supl. 2, p. s734, 2010. Abstract 91. Edição dos resumos da 25. Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Tecnologia de Embriões, Porto de Galinhas, PE, 2010.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos; Embrapa Gado de Leite. |
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| 97. | | NASCIMENTO, P. M. P. do; BRANDÃO, F. Z.; PEREIRA, P. F. V.; PONTELLO, V. R.; TAVARES, L. L.; OLIVEIRA, A. P.; BRUSCHI, J. H.; FONSECA, J. F. da. Production of teaser female goat by short-term protocol of exogenous androgen administration. In: INTERNATIONAL CONFERENCE ON GOATS, 9.; REUNIÓN NACIONAL SOBRE CAPRINOCULTURA, 23., 2008, Querétaro, México. Sustainable goat production: challenges and opportunities of small and large enterprises; proceedings. Querétaro: International Goat Association, 2008. p. 449. Abstract 362.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 98. | | OLIVEIRA, J. S. K.; FONSECA, J. F. da; ESTEVES, L. V.; MARTINS, G.; PENNA, B.; LILENBAUM, W.; FIGUEIRA, L. M.; BRANDÃO, F. Z. Mudanças na biota vaginal de cabras submetidas a protocolo de indução de estro sincronizado. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL, 19., 2011, Recife. Anais... Belo Horizonte: CBRA, 2011. p. 227. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 99. | | FONSECA, J. F. da; ESTEVES, L. V.; ZAMBRINI, F. N.; FERREIRA, M. I. C.; SIQUEIRA, L. G. B.; BRANDÃO, F. Z. Superovulation and embryo recovery by transcervical technique in Toggenburg goats during seasonal anestrus. In: ANNUAL MEETING - AETE, 29., 2013, Istanbul, Turkey. Colloque cientifique. Istanbu: Association Europeenne de Transfert Embryonnaire, 2013. p. 130.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 100. | | ESTEVES, L. V.; BRANDÃO, F. Z.; ZAMBRINI, F. N.; SIQUEIRA, L. G. B.; FERREIRA, M. I. C.; FONSECA, J. F. da. Superovulação e coleta de embriões pela via transcervical em cabras da raça Toggenburg durante a estação reprodutiva. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL, 20., 2013, Uberlandia. Anais... Belo Horizonte: CBRA, 2013. p. 57.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| Registros recuperados : 265 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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Data corrente: |
25/08/2017 |
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Data da última atualização: |
23/09/2019 |
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Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
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Autoria: |
OLIVARES, C. C. S.; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; PENEIRAS, A. B. V.; BALARO, M. F. A.; FREITAS, V. J. F.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. |
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Afiliação: |
Universidade Federal Fluminense (UFF); Universidade Estadual do Ceará (UECe) - Fortaleza, CE.; JEFERSON FERREIRA DA FONSECA, CNPC. |
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Título: |
The influence of different methods of frozen-thawed ovine spermatozoa selection on sperm capacitation and viability after incubation. |
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Ano de publicação: |
2015 |
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Fonte/Imprenta: |
Animal Reproduction, v. 12, n. 3, p. 554, Jul./Sept. 2015. |
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Idioma: |
Inglês |
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Notas: |
Proceedings of the 29th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Gramado, RS, Brazil, August 20 to 23, 2015. Abstracts. |
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Conteúdo: |
Abstract: Sperm capacitation is an essential event for fertilization; however, it decreases the sperm lifespan and viability. The aim of this study was to evaluate the effects of four sperm selection techniques on sperm capacitation and viability after incubation. A pool of frozen-thawed sperm from 10 Santa Inês rams was used. The samples were submitted to one of the following sperm selection techniques: sperm washing, Percoll gradient, mini-Percoll gradient, Swim-up and control group. At mini-Percoll technique, was used 400 microliters of 90% and 45% gradients and a centrifugation at 500 xg for 5 minutes. In Percoll, was used 1 mL of each gradient and a centrifugation at 700 xg for 10 minutos. During Swim-up, the sperm was incubated in 1 ml of SPERM-TALP for 45 minutos in humidified atmosphere at 37.5oC. Finaly, at sperm washing the sample suffered centrifugation at 300 xg for 8 minutes, using SPERM-TALP. At the end of each treatment, the selected spermatozoa were incubated at 37oC for 1 h, 2 h, and 3 h. Viability was assessed using acridine orange-propidium iodide combination by computer-assisted sperm analysis. Capacitation status was evaluated using chlortetracycline staining and observed under epifluorescence microscopy. Data were analyzed by ANOVA, followed by Tukey test (P<0.05). After 3 h of incubation, the capacitated sperm was decreased (P<0.05) in all treatments. The capacitated sperm rate was similar (P>0.05) among Percoll (36%), mini-Percoll (34%) and Swim-up (30%), and were lower (P<0.05) than control group (47%) and sperm washing (41%), regardless of the time of incubation. The non-capacitated sperm percentage was higher (P<0.05) at 0 h (12%) and decreased after 3 h (1.5%), in all treatments. Regarding to acrosome reacted cells, there was an interaction (P<0.05) between incubation and sperm selection treatment. The acrosome reacted spermatozoa showed a lower percentage (P<0.05) at 0 h (50%) and 1 h (53%) and higher after 3 h (64%). Percoll and mini-Percoll were higher about acrosome reacted spermatozoa (P<0.05; 60% vs. 61%), whereas control group was the lowest (49%). There was an interaction (P<0.05) between incubation and treatment in sperm viability. Viability assays revealed that 0 h resulted in a higher rate (17.5%; P<0.05) of membrane integrity, after all treatments. Swim-up treatment showed a higher membrane integrity rate (17.4%; P<0.05), regardless of time of incubation. In conclusion, the incubation affects the capacitation status and viability of frozen-thawed ovine sperm. Sperm selection increases the acrosome reacted cells rate and Swim-up allows better viability during incubation. [Influência de diferentes métodos de seleção de espermatozoides ovinos congelados sobre a capacitação e vitalidade espermática após incubação]. Resumo: Apesar de necessária para a fecundação, a capacitação espermática diminui a longevidade e vitalidade dos espermatozoides. Objetivou-se analisar os efeitos de quatro métodos de seleção espermática sobre a capacitação e vitalidade dos espermatozoides após incubação. Foi utilizado pool de sêmen congelado comercial de 10 carneiros da raça Santa Inês. As amostras foram submetidas aos diferentes métodos de seleção: lavagem por centrifugação, gradiente de Percoll, mini-Percoll, Swim-up e grupo controle. Na técnica de mini-Percoll, foi utilizado 400 microlitros dos gradientes de 90% e 45% e a amostra foi submetida a centrifugação por 5 minutos a 5000 xg. Para a técnica de Percoll, foi utilizado 1 mL de cada gradiente e os espermatozoides foram submetidos à força de 700 xg por 10 minutos. Durante o Swim-up, os espermatozoides foram incubados em 1 mL de SPERM-TALP por 45 minutos em atmosfera humidificada a 37,5oC. Já na lavagem por centrifugação, a amostra foi submetida a centrifugação por 8 minutos a 300 x g em SPERM-TALP. Posteriormente, os espermatozoides selecionados foram incubados a 37º C por 1 h, 2 h e 3 h. Foi avaliada a vitalidade por meio de iodedo de propídeo e laranja de acridina pelo sistema de avaliação seminal computadorizada. A capacitação espermática foi analisada pela coloração de hidroclorido de clortetraciclina em microscópio de epifluorescência. O efeito do método sobre os parâmetros foi avaliado pela ANOVA, seguido pelo teste de Tukey (P<0,05). Após 3 h, houve decréscimo da taxa de espermatozoides capacitados (P<0,05) em todos os métodos de seleção. Independente do momento de incubação, a taxa de capacitados foi similar (P>0,05) entre Percoll (36%), mini-Percoll (34%) e Swim-up (30%), as quais foram inferiores (P<0,05) ao grupo controle (47%) e lavagem por centrifugação (41%). A taxa de espermatozoides não capacitados foi superior (P<0,05) no momento 0 h (12%) e diminuiu após 3 h (1,5%), independentemente do método. Houve interação (P<0,05) entre intervalo de incubação e método na taxa de espermatozoides reagidos. O índice de reagidos foi menor (P<0,05) em 0 h (50%) e 1 h (53%) e maior após 3 h (64%). Percoll (60%) e mini-Percoll (61%) apresentaram maiores valores para reagidos (P<0,05) enquanto o controle apresentou o menor (49%). Observou-se interação (P<0,05) entre intervalo de incubação e método na vitalidade espermática. A taxa de íntegros em 0 h foi a maior (17,5%; P<0,05), após os diferentes métodos. O Swim-up apresentou maior taxa de íntegros (17,4%; P<0,05), independentemente do intervalo de incubação. Em conclusão, o intervalo de incubação interfere nos padrões de capacitação e vitalidade de espermatozoides ovinos congelados. A seleção espermática aumenta a taxa de células reagidas e o Swim-up permite maior vitalidade durante a incubação. MenosAbstract: Sperm capacitation is an essential event for fertilization; however, it decreases the sperm lifespan and viability. The aim of this study was to evaluate the effects of four sperm selection techniques on sperm capacitation and viability after incubation. A pool of frozen-thawed sperm from 10 Santa Inês rams was used. The samples were submitted to one of the following sperm selection techniques: sperm washing, Percoll gradient, mini-Percoll gradient, Swim-up and control group. At mini-Percoll technique, was used 400 microliters of 90% and 45% gradients and a centrifugation at 500 xg for 5 minutes. In Percoll, was used 1 mL of each gradient and a centrifugation at 700 xg for 10 minutos. During Swim-up, the sperm was incubated in 1 ml of SPERM-TALP for 45 minutos in humidified atmosphere at 37.5oC. Finaly, at sperm washing the sample suffered centrifugation at 300 xg for 8 minutes, using SPERM-TALP. At the end of each treatment, the selected spermatozoa were incubated at 37oC for 1 h, 2 h, and 3 h. Viability was assessed using acridine orange-propidium iodide combination by computer-assisted sperm analysis. Capacitation status was evaluated using chlortetracycline staining and observed under epifluorescence microscopy. Data were analyzed by ANOVA, followed by Tukey test (P<0.05). After 3 h of incubation, the capacitated sperm was decreased (P<0.05) in all treatments. The capacitated sperm rate was similar (P>0.05) among Percoll (36%), mini-Percoll (34%) and Swim-up (3... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Embryo Technology; Longevidade espermática; Raça Santa Inês; Seleção espermática; Sperm longevity; Sperm selection. |
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Thesagro: |
Carneiro; Espermatozóide; Ovino; Reprodução animal; Sêmen; Transferência de Embrião. |
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Thesaurus NAL: |
Rams; Reproduction; Sheep. |
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Categoria do assunto: |
L Ciência Animal e Produtos de Origem Animal |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/163050/1/cnpc-2015-The-influence.pdf
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Marc: |
LEADER 07025nam a2200373 a 4500
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100 1 $aOLIVARES, C. C. S.
245 $aThe influence of different methods of frozen-thawed ovine spermatozoa selection on sperm capacitation and viability after incubation.$h[electronic resource]
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500 $aProceedings of the 29th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Gramado, RS, Brazil, August 20 to 23, 2015. Abstracts.
520 $aAbstract: Sperm capacitation is an essential event for fertilization; however, it decreases the sperm lifespan and viability. The aim of this study was to evaluate the effects of four sperm selection techniques on sperm capacitation and viability after incubation. A pool of frozen-thawed sperm from 10 Santa Inês rams was used. The samples were submitted to one of the following sperm selection techniques: sperm washing, Percoll gradient, mini-Percoll gradient, Swim-up and control group. At mini-Percoll technique, was used 400 microliters of 90% and 45% gradients and a centrifugation at 500 xg for 5 minutes. In Percoll, was used 1 mL of each gradient and a centrifugation at 700 xg for 10 minutos. During Swim-up, the sperm was incubated in 1 ml of SPERM-TALP for 45 minutos in humidified atmosphere at 37.5oC. Finaly, at sperm washing the sample suffered centrifugation at 300 xg for 8 minutes, using SPERM-TALP. At the end of each treatment, the selected spermatozoa were incubated at 37oC for 1 h, 2 h, and 3 h. Viability was assessed using acridine orange-propidium iodide combination by computer-assisted sperm analysis. Capacitation status was evaluated using chlortetracycline staining and observed under epifluorescence microscopy. Data were analyzed by ANOVA, followed by Tukey test (P<0.05). After 3 h of incubation, the capacitated sperm was decreased (P<0.05) in all treatments. The capacitated sperm rate was similar (P>0.05) among Percoll (36%), mini-Percoll (34%) and Swim-up (30%), and were lower (P<0.05) than control group (47%) and sperm washing (41%), regardless of the time of incubation. The non-capacitated sperm percentage was higher (P<0.05) at 0 h (12%) and decreased after 3 h (1.5%), in all treatments. Regarding to acrosome reacted cells, there was an interaction (P<0.05) between incubation and sperm selection treatment. The acrosome reacted spermatozoa showed a lower percentage (P<0.05) at 0 h (50%) and 1 h (53%) and higher after 3 h (64%). Percoll and mini-Percoll were higher about acrosome reacted spermatozoa (P<0.05; 60% vs. 61%), whereas control group was the lowest (49%). There was an interaction (P<0.05) between incubation and treatment in sperm viability. Viability assays revealed that 0 h resulted in a higher rate (17.5%; P<0.05) of membrane integrity, after all treatments. Swim-up treatment showed a higher membrane integrity rate (17.4%; P<0.05), regardless of time of incubation. In conclusion, the incubation affects the capacitation status and viability of frozen-thawed ovine sperm. Sperm selection increases the acrosome reacted cells rate and Swim-up allows better viability during incubation. [Influência de diferentes métodos de seleção de espermatozoides ovinos congelados sobre a capacitação e vitalidade espermática após incubação]. Resumo: Apesar de necessária para a fecundação, a capacitação espermática diminui a longevidade e vitalidade dos espermatozoides. Objetivou-se analisar os efeitos de quatro métodos de seleção espermática sobre a capacitação e vitalidade dos espermatozoides após incubação. Foi utilizado pool de sêmen congelado comercial de 10 carneiros da raça Santa Inês. As amostras foram submetidas aos diferentes métodos de seleção: lavagem por centrifugação, gradiente de Percoll, mini-Percoll, Swim-up e grupo controle. Na técnica de mini-Percoll, foi utilizado 400 microlitros dos gradientes de 90% e 45% e a amostra foi submetida a centrifugação por 5 minutos a 5000 xg. Para a técnica de Percoll, foi utilizado 1 mL de cada gradiente e os espermatozoides foram submetidos à força de 700 xg por 10 minutos. Durante o Swim-up, os espermatozoides foram incubados em 1 mL de SPERM-TALP por 45 minutos em atmosfera humidificada a 37,5oC. Já na lavagem por centrifugação, a amostra foi submetida a centrifugação por 8 minutos a 300 x g em SPERM-TALP. Posteriormente, os espermatozoides selecionados foram incubados a 37º C por 1 h, 2 h e 3 h. Foi avaliada a vitalidade por meio de iodedo de propídeo e laranja de acridina pelo sistema de avaliação seminal computadorizada. A capacitação espermática foi analisada pela coloração de hidroclorido de clortetraciclina em microscópio de epifluorescência. O efeito do método sobre os parâmetros foi avaliado pela ANOVA, seguido pelo teste de Tukey (P<0,05). Após 3 h, houve decréscimo da taxa de espermatozoides capacitados (P<0,05) em todos os métodos de seleção. Independente do momento de incubação, a taxa de capacitados foi similar (P>0,05) entre Percoll (36%), mini-Percoll (34%) e Swim-up (30%), as quais foram inferiores (P<0,05) ao grupo controle (47%) e lavagem por centrifugação (41%). A taxa de espermatozoides não capacitados foi superior (P<0,05) no momento 0 h (12%) e diminuiu após 3 h (1,5%), independentemente do método. Houve interação (P<0,05) entre intervalo de incubação e método na taxa de espermatozoides reagidos. O índice de reagidos foi menor (P<0,05) em 0 h (50%) e 1 h (53%) e maior após 3 h (64%). Percoll (60%) e mini-Percoll (61%) apresentaram maiores valores para reagidos (P<0,05) enquanto o controle apresentou o menor (49%). Observou-se interação (P<0,05) entre intervalo de incubação e método na vitalidade espermática. A taxa de íntegros em 0 h foi a maior (17,5%; P<0,05), após os diferentes métodos. O Swim-up apresentou maior taxa de íntegros (17,4%; P<0,05), independentemente do intervalo de incubação. Em conclusão, o intervalo de incubação interfere nos padrões de capacitação e vitalidade de espermatozoides ovinos congelados. A seleção espermática aumenta a taxa de células reagidas e o Swim-up permite maior vitalidade durante a incubação.
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700 1 $aSOUZA-FABJAN, J. M. G.
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700 1 $aFREITAS, V. J. F.
700 1 $aFONSECA, J. F. da
700 1 $aBRANDÃO, F. Z.
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Embrapa Caprinos e Ovinos (CNPC) |
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