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Registro Completo |
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Biblioteca(s): |
Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
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Data corrente: |
04/12/2020 |
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Data da última atualização: |
04/12/2020 |
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Tipo da produção científica: |
Orientação de Tese de Pós-Graduação |
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Autoria: |
HIMMEN, F. D. A. |
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Título: |
Micropropagação, dinâmica da metilação e micorrização de Dendrocalamus asper (Poaceae: Bambusoideae). |
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Ano de publicação: |
2020 |
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Fonte/Imprenta: |
2020. |
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Idioma: |
Português |
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Notas: |
Dissertação (Mestrado em Ciências Florestais)- Engenharia Florestal - Universidade de Brasília, DF. Orientador: Jonny Everson Scherwinski-Pereira, Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia;coorientador: Francisco Adriano de Souza. |
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Conteúdo: |
Este trabalho teve por objetivo desenvolver um protocolo de micropropagação, analisar a dinâmica de metilação do DNA durante a multiplicação das plantas, bem como a capacidade de micorrização in vitro e ex vitro das plantas, verificando o efeito de substratos e a adaptação anatômicas durante a aclimatização de mudas micropropagadas de Dendrocalamus asper. Para tanto testou-se as citocininas (CK) 6-benzilaminopurina (BAP), cinetina (Kn) e meta-Topolina (mT) em diferentes concentrações. Em cada um dos três subcultivos, realizou- se o acompanhamento da metilação do DNA do material em cultivo. Após a etapa de multiplicação in vitro, as plantas foram aclimatizadas em casa de vegetação e, para a micorrização in vitro, inicialmente a concentração de fósforo (KH2PO4) do meio de MS (Murashige & Skoog) foi reduzida. Além disso, também se comparou a micorrização utilizando-se o meio MSR (Medium Strullu-Romand) em sua concentração original de fósforo do referido meio. A citocinina mais eficiente para a multiplicação de D. asper foi a mT na concentração 13,3 ?M, que proporcionou as maiores médias nos parâmetros avaliados (número de brotos, hastes, gemas, altura e taxa de multiplicação). De forma geral foi observado redução do número de brotos no terceiro subcultivo. A análise da metilação de DNA mostrou que o pico de metilação de DNA ocorreu no primeiro subcultivo, seguido de decréscimo gradual no segundo e terceiro ciclos de multiplicação, coincidindo com os resultados da metilação avaliados.Posteriormente, avaliou-se a micorrização ex vitro de mudas micropropagadas, a partir do uso de três substratos: 1) Bioplant® + areia (1:1 v/v); 2) Carolina Soil® + areia (1:1 v/v), e; 3) terra de subsolo. Aos substratos foram ainda combinados ou não o fungo micorrízico arbuscular (FMA) Rhizoglomus clarum, totalizando seis tratamentos. Antes do transplante das mudas para o ambiente ex vitro, elas foram mantidas em sala de cultura, em meio de MS suplementado com 1,5 mg/L de Metatopolina. Para verificar as adaptações anatômicas das mudas nos diferentes ambientes, amostras de folhas e raízes foram coletadas de plantas dos ambientes in vitro e ex vitro. Adicionalmente, mensurou-se a área foliar das plantas antes e durante a aclimatização. No experimento de micorrização in vitro, constatou-se taxas de colonização de 16% das plantas em meio MSR. Nos demais tratamentos, não houve colonização. Apesar disso, não foram observados danos no desenvolvimento das plantas devido a redução do fósforo no meio de cultivo. Já no experimento de otimização, verificou-se taxas de colonização de até 25% das plantas nos tratamentos onde se utilizou o meio de MS com metade dos sais e com apenas 0,4 % da concentração original de fósforo, e naquele com MS na metade dos sais e 25% da quantidade total de sacarose.Com relação às análises anatômicas, verificou-se especialmente o incremento da espessura e área foliar e radicular das plantas em ambiente ex vitro em relação ao in vitro, indicando plasticidade adaptativa das plantas às novas condições ambientais. MenosEste trabalho teve por objetivo desenvolver um protocolo de micropropagação, analisar a dinâmica de metilação do DNA durante a multiplicação das plantas, bem como a capacidade de micorrização in vitro e ex vitro das plantas, verificando o efeito de substratos e a adaptação anatômicas durante a aclimatização de mudas micropropagadas de Dendrocalamus asper. Para tanto testou-se as citocininas (CK) 6-benzilaminopurina (BAP), cinetina (Kn) e meta-Topolina (mT) em diferentes concentrações. Em cada um dos três subcultivos, realizou- se o acompanhamento da metilação do DNA do material em cultivo. Após a etapa de multiplicação in vitro, as plantas foram aclimatizadas em casa de vegetação e, para a micorrização in vitro, inicialmente a concentração de fósforo (KH2PO4) do meio de MS (Murashige & Skoog) foi reduzida. Além disso, também se comparou a micorrização utilizando-se o meio MSR (Medium Strullu-Romand) em sua concentração original de fósforo do referido meio. A citocinina mais eficiente para a multiplicação de D. asper foi a mT na concentração 13,3 ?M, que proporcionou as maiores médias nos parâmetros avaliados (número de brotos, hastes, gemas, altura e taxa de multiplicação). De forma geral foi observado redução do número de brotos no terceiro subcultivo. A análise da metilação de DNA mostrou que o pico de metilação de DNA ocorreu no primeiro subcultivo, seguido de decréscimo gradual no segundo e terceiro ciclos de multiplicação, coincidindo com os resultados da metilação aval... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Aclimatização; Bambusoideae; Fungos micorrízicos arbusculares (FMAs); Metilação do DNA; Propagação in vitro. |
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Thesaurus Nal: |
Poaceae. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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Marc: |
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500 $aDissertação (Mestrado em Ciências Florestais)- Engenharia Florestal - Universidade de Brasília, DF. Orientador: Jonny Everson Scherwinski-Pereira, Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia;coorientador: Francisco Adriano de Souza.
520 $aEste trabalho teve por objetivo desenvolver um protocolo de micropropagação, analisar a dinâmica de metilação do DNA durante a multiplicação das plantas, bem como a capacidade de micorrização in vitro e ex vitro das plantas, verificando o efeito de substratos e a adaptação anatômicas durante a aclimatização de mudas micropropagadas de Dendrocalamus asper. Para tanto testou-se as citocininas (CK) 6-benzilaminopurina (BAP), cinetina (Kn) e meta-Topolina (mT) em diferentes concentrações. Em cada um dos três subcultivos, realizou- se o acompanhamento da metilação do DNA do material em cultivo. Após a etapa de multiplicação in vitro, as plantas foram aclimatizadas em casa de vegetação e, para a micorrização in vitro, inicialmente a concentração de fósforo (KH2PO4) do meio de MS (Murashige & Skoog) foi reduzida. Além disso, também se comparou a micorrização utilizando-se o meio MSR (Medium Strullu-Romand) em sua concentração original de fósforo do referido meio. A citocinina mais eficiente para a multiplicação de D. asper foi a mT na concentração 13,3 ?M, que proporcionou as maiores médias nos parâmetros avaliados (número de brotos, hastes, gemas, altura e taxa de multiplicação). De forma geral foi observado redução do número de brotos no terceiro subcultivo. A análise da metilação de DNA mostrou que o pico de metilação de DNA ocorreu no primeiro subcultivo, seguido de decréscimo gradual no segundo e terceiro ciclos de multiplicação, coincidindo com os resultados da metilação avaliados.Posteriormente, avaliou-se a micorrização ex vitro de mudas micropropagadas, a partir do uso de três substratos: 1) Bioplant® + areia (1:1 v/v); 2) Carolina Soil® + areia (1:1 v/v), e; 3) terra de subsolo. Aos substratos foram ainda combinados ou não o fungo micorrízico arbuscular (FMA) Rhizoglomus clarum, totalizando seis tratamentos. Antes do transplante das mudas para o ambiente ex vitro, elas foram mantidas em sala de cultura, em meio de MS suplementado com 1,5 mg/L de Metatopolina. Para verificar as adaptações anatômicas das mudas nos diferentes ambientes, amostras de folhas e raízes foram coletadas de plantas dos ambientes in vitro e ex vitro. Adicionalmente, mensurou-se a área foliar das plantas antes e durante a aclimatização. No experimento de micorrização in vitro, constatou-se taxas de colonização de 16% das plantas em meio MSR. Nos demais tratamentos, não houve colonização. Apesar disso, não foram observados danos no desenvolvimento das plantas devido a redução do fósforo no meio de cultivo. Já no experimento de otimização, verificou-se taxas de colonização de até 25% das plantas nos tratamentos onde se utilizou o meio de MS com metade dos sais e com apenas 0,4 % da concentração original de fósforo, e naquele com MS na metade dos sais e 25% da quantidade total de sacarose.Com relação às análises anatômicas, verificou-se especialmente o incremento da espessura e área foliar e radicular das plantas em ambiente ex vitro em relação ao in vitro, indicando plasticidade adaptativa das plantas às novas condições ambientais.
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Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia (CENARGEN) |
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