| |
|
|
 | Acesso ao texto completo restrito à biblioteca da Embrapa Agroenergia. Para informações adicionais entre em contato com biblioteca@embrapa.br. |
|
Registro Completo |
|
Biblioteca(s): |
Embrapa Agroenergia. |
|
Data corrente: |
14/12/2015 |
|
Data da última atualização: |
22/02/2016 |
|
Tipo da produção científica: |
Orientação de Tese de Pós-Graduação |
|
Autoria: |
CAMPOS, C. G. |
|
Afiliação: |
CHRISTIANE GONÇALVES CAMPOS, UNB. |
|
Título: |
Desenvolvimento de protocolos analíticos em metabolômica de leveduras fermentadoras de xilose. |
|
Ano de publicação: |
2015 |
|
Fonte/Imprenta: |
2015. |
|
Páginas: |
105 f. |
|
Idioma: |
Português |
|
Notas: |
Dissertação (Mestrado em Química) - Universidade de Brasília, Brasília, DF. Orientadora CNPAE: Patrícia Verardi Abdelnur. |
|
Conteúdo: |
O aumento na demanda por fontes de energia alternativa e as preocupações com os impactos ambientais tem incentivado o desenvolvimento de tecnologias para a produção de combustíveis a partir de biomassa lignocelulósica, como o etanol de segunda geração (2G). No entanto um dos açúcares mais abundante nas biomassas lignocelulósicas, a xilose, não pode ser convertida a etanol devido à incapacidade da levedura Saccharomyces cerevisiae, microrganismo mundialmente utilizado na indústria para produção de etanol, de converter eficientemente esse substrato em xilulose. A tecnologia baseada em metabolômica mostra-se eficiente, como uma ferramenta para auxiliar na determinação das etapas limitantes na via metabólica de fermentação da xilose. Neste trabalho, foram desenvolvidos e otimizados dois protocolos para análise de metabolômica targeted, utilizando como plataforma analítica a cromatografia líquida acoplada à espectrometria de massas tandem (LC-MS/MS) com experimentos de MRM. Os métodos de separação foram baseados na cromatografia por pareamento iônico utilizando uma coluna de fase reversa (HSS-T3) e na cromatografia de interação hidrofílica (HILIC), utilizando uma coluna quimicamente modificada com o grupo amida. Catorze padrões de metabólitos presentes na via de fermentação da xilose puderam ser identificados através de dois métodos complementares. Estes protocolos foram aplicados qualitativamente durante a avaliação de duas leveduras, Scheffersomyces stipitis e Spathaspora passalidarum. O preparo de amostra foi realizado em duas etapas: quenching e extração dos metabólitos. Os métodos de separação e detecção se mostraram promissores para a análise de rotina em processos de fermentação de xilose. MenosO aumento na demanda por fontes de energia alternativa e as preocupações com os impactos ambientais tem incentivado o desenvolvimento de tecnologias para a produção de combustíveis a partir de biomassa lignocelulósica, como o etanol de segunda geração (2G). No entanto um dos açúcares mais abundante nas biomassas lignocelulósicas, a xilose, não pode ser convertida a etanol devido à incapacidade da levedura Saccharomyces cerevisiae, microrganismo mundialmente utilizado na indústria para produção de etanol, de converter eficientemente esse substrato em xilulose. A tecnologia baseada em metabolômica mostra-se eficiente, como uma ferramenta para auxiliar na determinação das etapas limitantes na via metabólica de fermentação da xilose. Neste trabalho, foram desenvolvidos e otimizados dois protocolos para análise de metabolômica targeted, utilizando como plataforma analítica a cromatografia líquida acoplada à espectrometria de massas tandem (LC-MS/MS) com experimentos de MRM. Os métodos de separação foram baseados na cromatografia por pareamento iônico utilizando uma coluna de fase reversa (HSS-T3) e na cromatografia de interação hidrofílica (HILIC), utilizando uma coluna quimicamente modificada com o grupo amida. Catorze padrões de metabólitos presentes na via de fermentação da xilose puderam ser identificados através de dois métodos complementares. Estes protocolos foram aplicados qualitativamente durante a avaliação de duas leveduras, Scheffersomyces stipitis e Spathaspora passa... Mostrar Tudo |
|
Palavras-Chave: |
Etanol 2G; Etanol de segunda geração; Xilose. |
|
Categoria do assunto: |
-- |
|
Marc: |
LEADER 02366nam a2200169 a 4500
001 2031610
005 2016-02-22
008 2015 bl uuuu m 00u1 u #d
100 1 $aCAMPOS, C. G.
245 $aDesenvolvimento de protocolos analíticos em metabolômica de leveduras fermentadoras de xilose.$h[electronic resource]
260 $a2015.$c2015
300 $a105 f.
500 $aDissertação (Mestrado em Química) - Universidade de Brasília, Brasília, DF. Orientadora CNPAE: Patrícia Verardi Abdelnur.
520 $aO aumento na demanda por fontes de energia alternativa e as preocupações com os impactos ambientais tem incentivado o desenvolvimento de tecnologias para a produção de combustíveis a partir de biomassa lignocelulósica, como o etanol de segunda geração (2G). No entanto um dos açúcares mais abundante nas biomassas lignocelulósicas, a xilose, não pode ser convertida a etanol devido à incapacidade da levedura Saccharomyces cerevisiae, microrganismo mundialmente utilizado na indústria para produção de etanol, de converter eficientemente esse substrato em xilulose. A tecnologia baseada em metabolômica mostra-se eficiente, como uma ferramenta para auxiliar na determinação das etapas limitantes na via metabólica de fermentação da xilose. Neste trabalho, foram desenvolvidos e otimizados dois protocolos para análise de metabolômica targeted, utilizando como plataforma analítica a cromatografia líquida acoplada à espectrometria de massas tandem (LC-MS/MS) com experimentos de MRM. Os métodos de separação foram baseados na cromatografia por pareamento iônico utilizando uma coluna de fase reversa (HSS-T3) e na cromatografia de interação hidrofílica (HILIC), utilizando uma coluna quimicamente modificada com o grupo amida. Catorze padrões de metabólitos presentes na via de fermentação da xilose puderam ser identificados através de dois métodos complementares. Estes protocolos foram aplicados qualitativamente durante a avaliação de duas leveduras, Scheffersomyces stipitis e Spathaspora passalidarum. O preparo de amostra foi realizado em duas etapas: quenching e extração dos metabólitos. Os métodos de separação e detecção se mostraram promissores para a análise de rotina em processos de fermentação de xilose.
653 $aEtanol 2G
653 $aEtanol de segunda geração
653 $aXilose
Download
Esconder MarcMostrar Marc Completo |
|
Registro original: |
Embrapa Agroenergia (CNPAE) |
|
|
Biblioteca |
ID |
Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
URL |
Voltar
|
|
|
| Registros recuperados : 1 | |
| 1. |  | HUG, L. A.; HATZENPICHLER, R.; MORARU, C.; SOARES, A, R.; MEYER, F.; HEYDER, A.; ABDALLAH, R. A.; ABDALRAHEM, A.; ABDULKADIR, N.; ADESIYAN, I. M.; ALTEIO, L.; ANANTHARAMAN, K.; ANDERSON, R.; ANDREI, A-S.; BAEZA, J. A.; BAK, F.; BAKER, B.; BARTHOLOMÄUS, A.; BEJERMAN, N.; BIDDLE, J.; BISSETT, A.; BLAKELEY-RUIZ, J. A.; BLOCK, K.; BOLDT, J.; BONILLA-ROSSO, G.; BORNEMANN, T. L.; BRAUER, V. S.; BRAZELTON, W.; BREMGES, A.; BUELOW, E.; BURCHAM, Z. M.; CANSDALE, A.; CAPORASO, J. G.; CERNAVA, T.; CHATZIGIANNIDOU, I.; COSTA, R.; CURRIE, C. R.; DAEBELER, A.; DE ANDA, V.; DE SANTIAGO, A.; TACCA, L. M. A. de; DEBELIUS, J.; DITTAMI, S. M.; DONG, X.; DŽUNKOVÁ, M.; EDWARDS, A.; EDWARDS, R.; EGBERT, S.; ENGELMANN, J. C.; ESSER, S. P.; ETTEMA, T. J. G.; ETTINGER, C. L.; FABIJAN, A. P.; FERGUSON, R. M. W.; FERRETTI, P.; FOUCAULT, P.; FUHRMAN, J. A.; GADA, A. M.; GEESINK, P.; GERHARDT, I. R.; GESSNER, M. O.; GIOVANNELLI, D.; GITTINS, D.; GLOOR, G. B.; GONZÁLEZ-PECH, R. A.; GOPALAKRISHNAPPA, C.; GREENING, C.; GREGOR, R.; GREGORY, A. C.; GROSSART, H.-P.; GROUSSIN, M.; GUERRERO, B. V.; GUZEL, M.; HAMAMURA, N.; HAMILTON, T. L.; HAMM, J. N.; HART, L.; HASSENRÜCK, C.; HAY, M.; HECHLER, R. M.; HELLWIG, P.; HENSON, M.; HEROLD, M.; HESKETH-BEST, P. J.; HESS, M.; HILLARY, L.; HITCH, T. C.; HIVARKAR, S. S.; HOFF, K. J.; HOM, E. F.; HOU, S.; HUGERTH, L. W.; HWANG, Y.; ILOTT, N.; JAY, Z. J.; JUNGBLUTH, S. P.; KARIMI, E.; KASPAREIT, Y. M.; KEATING, C.; KELLOM, M.; KILEDAL, E. A.; KLARENBERG, I.; KNIGHT, R.; KOECH, A. K.; KOONIN, E. V.; KORMAS, K.; KUJALA, K.; KYRPIDES, N. C.; LA ROSA, S. L.; LACZNY, C. C.; LAHMERS, K.; LAN, X.; LATEEF, A. A.; LAU, S. H.; LEESE, F.; LEZCANO, M. A.; LI, S. S.; LIMA, R. N.; LÜCKER, S.; MAHNERT, A.; MAJIDIAN, S.; MALFERTHEINER, L.; MARSHALL, A.; MEADEN, S.; MEEHAN, C. J.; MEIER, D. V.; MELKONIAN, C.; MENDE, D. R.; MEYER, J. L.; MICHOUD, G.; MIKRYUKOV, V.; MIRAVET-VERDE, S.; MUSCHIOL, J.; NATA’ALA, M. K.; NEUFELD, J. D.; NEUHAUSER, S.; OSUOLALE, O.; OSVATIC, J.; PAPPAS, K. M.; PARKS, D. H.; PARRY, R. H.; PASCOAL, P. V.; PAVLOUDI, C.; PEYTON, B.; PLEWKA, J.; POYET, M.; PRIEST, T.; QUAYE, E. K.; RAMGANESH, S.; RATTEI, T.; RAUSCH, P.; RECH FILHO, E. L.; RINKE, C.; ROBINSON, C.; RODRÍGUEZ-GIJÓN, A.; RODRIGUEZ-R, L. M.; ROHWER, R. R.; ROLOFF, T.; ROTHMAN, J. A.; RÜCKERT, S.; RUFF, S. E.; SAINI, J. S.; SANTIAGO-MARTÍNEZ, M. G.; SANTOFERRARA, L.; SARHAN, M. S.; SAW, J. H.; SBAFFI, T.; SCHÄFER, R. B.; SCHAIBLE, G.; SCHLOTER, M.; SCHMITZ, R. A.; SCHUBERT, C.; SCHWENGERS, O.; SEHNAL, L.; SEKAR, A.; SEKAR, J.; SEYOUM, M. M.; SHAH, M. B.; SHARON, I.; SIEBERS, B.; SIERADZKI, E. T.; SKLIROS, D.; SNOEYENBOS-WEST, O. L.; SORBIE, A.; SPETH, D. R.; SPREHN, C. G.; SRIVASTAVA, P.; STACH, T. L.; STAJICH, J. E.; STARKE, J.; STEEN, A. D.; STÖCKL, R.; STOIKIDOU, T.; STOPNISEK, N.; SUKUMARAN, R.; SURES, B.; SUZUKI, S.; TAMARIT, D.; THIERINGER, P.; TITO, R. Y.; TRIVEDI, C. B.; TRUBL, G.; TRUU, J.; TSIKNIA, M.; UGALDE, J.; VALENTIN-ALVARADO, L. E.; VÁZQUEZ-CAMPOS, X.; VIERHEILIG, J.; MEIJENFELDT, F. A. B. von; WAGNER, M.; WALSH, C. J.; WANG, S.; WANG, Y.; WEGNER, C.-E.; WEIR, T.; WEISS, L. C.; WEISSMAN, J. L.; WICHELS, A.; WILLIAMS, C. L.; WILLIAMS, T. A.; WORDEN, A. Z.; WOYKE, T.; WU, M.; XIU, W.; ZHANG, Y.; ZHU, J.; ZIELS, R. M.; ZWIRZITZ, B.; PROBST, A. J. A roadmap for equitable reuse of public microbiome data. Nature Microbiology, v. 10, p. 2384–2395, 2025. Na publicação: E. Rech.| Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: A - 1 |
| Biblioteca(s): Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. |
|    |
| Registros recuperados : 1 | |
|
| Expressão de busca inválida. Verifique!!! |
|
|
