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Registro Completo |
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Biblioteca(s): |
Embrapa Cerrados. |
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Data corrente: |
19/09/1997 |
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Data da última atualização: |
10/01/2007 |
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Autoria: |
HOHN, T.; SCHELL, J. (ed.). |
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Título: |
Plant DNA infectious agents. |
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Ano de publicação: |
1987 |
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Fonte/Imprenta: |
New York: Springer-Verlag, 1987. |
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Páginas: |
348p. |
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Série: |
(Plant Gene Research: Basic Knowledge and Application). |
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ISBN: |
0-387-81995-9 |
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Idioma: |
Inglês |
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Conteúdo: |
The molecular biology of cauliflower mosaic virus and its application as plant gene vector. The structure, expression, functions and possible exploitation of geminivirus genomes. cDNA cloning of plant RNA viruses and viroids. Agroinfection. The mechanism of T-DNA transfer from agrobacterium tumefaciens to the plant cell. Molecular analysis of root induction by agrobacterium rhizogenes. Pathways to plant genetic manipulation employing agrobacterium. Plant transposable elements: unique structures for gene tagging and gene cloning. Direct gene transfer to plant. Microinjection: An experimental tool for studying and modifying plant cells. Transformation of chlamydomonas reinharditii. Induction of expression in and stable transformation of an algal cell by nuclear microinjection with naked DNA. Transient expression of DNA in plant cells. Plastid transformation: a progress report. Targeting nuclear gene products into chloroplasts. |
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Palavras-Chave: |
Plant diseases. |
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Thesagro: |
Bactéria; Biologia Molecular; Biotecnologia; DNA; Doença de Planta; Engenharia Genética; Gene; RNA; Vírus. |
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Thesaurus Nal: |
Agrobacterium; biotechnology; gene transfer; genetic engineering; molecular biology; viroids; viruses. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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Marc: |
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Registro original: |
Embrapa Cerrados (CPAC) |
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Biblioteca |
ID |
Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
URL |
Voltar
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Florestas. |
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Data corrente: |
20/12/2022 |
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Data da última atualização: |
20/12/2022 |
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Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
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Autoria: |
BEZERRA, J. C. F.; MOTA, T. A. da; SILVA, P. G.; ANJOS, B. F. dos; SILVA, M. dos S. da; BARBOSA, L. R.; WILCKEN, C. F. |
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Afiliação: |
JADE CRISTYNNE FRANCO BEZERRA, LABORATÓRIO DE CONTROLE BIOLÓGICO DE PRAGAS FLORESTAIS - FCA/UNESP - CAMPUS BOTUCATU, SP; THAIS A. DA MOTA, LABORATÓRIO DE CONTROLE BIOLÓGICO DE PRAGAS FLORESTAIS - FCA/UNESP - CAMPUS BOTUCATU, SP; PAULA G. SILVA, LABORATÓRIO DE CONTROLE BIOLÓGICO DE PRAGAS FLORESTAIS - FCA/UNESP - CAMPUS BOTUCATU, SP; BRUNA F. DOS ANJOS, LABORATÓRIO DE CONTROLE BIOLÓGICO DE PRAGAS FLORESTAIS - FCA/UNESP - CAMPUS BOTUCATU, SP; MAICON DOS S. DA SILVA, LABORATÓRIO DE CONTROLE BIOLÓGICO DE PRAGAS FLORESTAIS - FCA/UNESP - CAMPUS BOTUCATU, SP; LEONARDO RODRIGUES BARBOSA, CNPF; CARLOS F. WILCKEN, LABORATÓRIO DE CONTROLE BIOLÓGICO DE PRAGAS FLORESTAIS - FCA/UNESP - CAMPUS BOTUCATU, SP. |
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Título: |
Métodos de liberação de Cleruchoides noackae (Hymenoptera: Myrmaridae) para controle biológico de Thaumastocoris peregrinus (Hemiptera: Thaumastocoridae). |
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Ano de publicação: |
2022 |
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Fonte/Imprenta: |
In: CONGRESSO BRASILEIRO DE ENTOMOLOGIA, 28., 2022, Fortaleza. Anais... Fortaleza: SEB, 2022. p. 883. |
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Idioma: |
Português |
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Conteúdo: |
Cleruchoides noackae é o controle biológico mais utilizado para Thaumastocoris peregrinus em plantios de eucalipto. Liberações pontuais no campo são eficientes para regular os níveis populacionais da praga. Portanto, é importante garantir que o método de liberação proteja os ovos parasitados e facilite a localização do hospedeiro. O Bioclip® é um produto comercial sustentável muito utilizado no Chile e na Espanha feito de um polímero biodegradável para liberação de parasitoides no campo. Diante do exposto, o objetivo deste trabalho foi comparar três dispositivos para a liberação de C. noackae em laboratório e no campo. Foram realizados dois ensaios: Em laboratório, foram avaliados os seguintes dispositivos: Bioclip®, cápsulas de papelão e potes de poliestireno (temperatura de 24±2ºC, 70±10% UR e fotófase de 12h). No campo, foi montado teste com o melhor método do primeiro ensaio. Ambos montados 24 horas antes da emergência dos parasitoides. Foram realizadas 3 repetições com 50 ovos de T. peregrinus parasitados/repetição. Os ovos foram acondicionados no interior de potes plásticos de 3,6 L para a recuperação dos parasitoides emergidos. Foram contados o número de insetos emergidos nos potes e retidos nos dispositivos. Em campo, foram distribuídos 6 Bioclips® contendo 40 ovos parasitados, onde foram presos nos galhos a 1,70m do solo. Os insetos mortos retidos foram contados. Os dados foram analisados por GLM, as comparações entre os tratamentos foram feitas pelo teste de Duncan (P<0,05). A emergência de C. noackae nos liberadores em laboratório foi de: 38% para o Bioclip®, 10% para as cápsulas de papelão e 40% para o tratamento controle. O Bioclip® não apresentou diferença significativa de liberação com o tratamento controle. A cápsula de papelão apresentou a maior taxa de insetos retidos. Em campo, observou-se média de 15% de insetos retidos no Bioclip®. Portanto, esse dispositivo além de sustentável, auxilia na liberação mais segura e efetiva dos parasitoides. MenosCleruchoides noackae é o controle biológico mais utilizado para Thaumastocoris peregrinus em plantios de eucalipto. Liberações pontuais no campo são eficientes para regular os níveis populacionais da praga. Portanto, é importante garantir que o método de liberação proteja os ovos parasitados e facilite a localização do hospedeiro. O Bioclip® é um produto comercial sustentável muito utilizado no Chile e na Espanha feito de um polímero biodegradável para liberação de parasitoides no campo. Diante do exposto, o objetivo deste trabalho foi comparar três dispositivos para a liberação de C. noackae em laboratório e no campo. Foram realizados dois ensaios: Em laboratório, foram avaliados os seguintes dispositivos: Bioclip®, cápsulas de papelão e potes de poliestireno (temperatura de 24±2ºC, 70±10% UR e fotófase de 12h). No campo, foi montado teste com o melhor método do primeiro ensaio. Ambos montados 24 horas antes da emergência dos parasitoides. Foram realizadas 3 repetições com 50 ovos de T. peregrinus parasitados/repetição. Os ovos foram acondicionados no interior de potes plásticos de 3,6 L para a recuperação dos parasitoides emergidos. Foram contados o número de insetos emergidos nos potes e retidos nos dispositivos. Em campo, foram distribuídos 6 Bioclips® contendo 40 ovos parasitados, onde foram presos nos galhos a 1,70m do solo. Os insetos mortos retidos foram contados. Os dados foram analisados por GLM, as comparações entre os tratamentos foram feitas pelo teste de Duncan... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Bioclip; Cleruchoides noackae; Percevejo bronzeado. |
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Thesagro: |
Controle Biológico; Eucalipto. |
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Categoria do assunto: |
O Insetos e Entomologia |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/doc/1150030/1/2022-CBE-anais-final-883.pdf
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Marc: |
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520 $aCleruchoides noackae é o controle biológico mais utilizado para Thaumastocoris peregrinus em plantios de eucalipto. Liberações pontuais no campo são eficientes para regular os níveis populacionais da praga. Portanto, é importante garantir que o método de liberação proteja os ovos parasitados e facilite a localização do hospedeiro. O Bioclip® é um produto comercial sustentável muito utilizado no Chile e na Espanha feito de um polímero biodegradável para liberação de parasitoides no campo. Diante do exposto, o objetivo deste trabalho foi comparar três dispositivos para a liberação de C. noackae em laboratório e no campo. Foram realizados dois ensaios: Em laboratório, foram avaliados os seguintes dispositivos: Bioclip®, cápsulas de papelão e potes de poliestireno (temperatura de 24±2ºC, 70±10% UR e fotófase de 12h). No campo, foi montado teste com o melhor método do primeiro ensaio. Ambos montados 24 horas antes da emergência dos parasitoides. Foram realizadas 3 repetições com 50 ovos de T. peregrinus parasitados/repetição. Os ovos foram acondicionados no interior de potes plásticos de 3,6 L para a recuperação dos parasitoides emergidos. Foram contados o número de insetos emergidos nos potes e retidos nos dispositivos. Em campo, foram distribuídos 6 Bioclips® contendo 40 ovos parasitados, onde foram presos nos galhos a 1,70m do solo. Os insetos mortos retidos foram contados. Os dados foram analisados por GLM, as comparações entre os tratamentos foram feitas pelo teste de Duncan (P<0,05). A emergência de C. noackae nos liberadores em laboratório foi de: 38% para o Bioclip®, 10% para as cápsulas de papelão e 40% para o tratamento controle. O Bioclip® não apresentou diferença significativa de liberação com o tratamento controle. A cápsula de papelão apresentou a maior taxa de insetos retidos. Em campo, observou-se média de 15% de insetos retidos no Bioclip®. Portanto, esse dispositivo além de sustentável, auxilia na liberação mais segura e efetiva dos parasitoides.
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Registro original: |
Embrapa Florestas (CNPF) |
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