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Registro Completo |
Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
Data corrente: |
05/09/2016 |
Data da última atualização: |
23/09/2019 |
Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
Autoria: |
ROSA, R. M.; BALARO, M. F. A.; PINTO, P. H. N.; SARAIVA, H. F. R. A.; BATISTA, R. I. T. P.; ALFRADIQUE, V. A. P.; RIBEIRO, L. S.; FONSECA, J. F. da; UNGERFELD, R.; BRANDÃO, F. Z. |
Afiliação: |
Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ; JEFERSON FERREIRA DA FONSECA, CNPC; Universidad de La República Uruguaniteroiy - Montevidéu; Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niteroi, RJ. |
Título: |
Follicular wave synchronization on in vivo embryo production in Santa Ines sheep. |
Ano de publicação: |
2016 |
Fonte/Imprenta: |
Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 474, Jul./Sept. 2016. |
Idioma: |
Inglês |
Notas: |
Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain, September 9th and 10th, 2016. |
Conteúdo: |
Abstract: This study aimed to evaluate two hormonal protocols for synchronization of follicular wave emergence on in vivo embryo production in Santa Ines sheep under tropical conditions. Twenty two nulliparous Santa Ines sheep, kept on intensive system, were used. Group one (GT, n = 10) received an intravaginal implant containing 0.33 g of progesterone (Eazi-Breed CIDR® Sheep and Goats, Zoetis Ltda, São Paulo, Brazil) for all period of hormonal protocol and 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) i.m.. Group two (GEm; n = 12) received the synchronization of the follicular wave emergence as proposed by Balaro et al. (2016). The superovulation started after 56 and 80 hours, from GT and GEm, respectively. For both groups, 200 mg of FSHp/per animal were administered (Folltropin®, National Pharmaceutical Chemistry Union S/A, São Paulo, Brazil) in six decreasing doses (25%/25%, 15%/15% and 10%/10%) every 12 hours. In GEm, at the first FSHp dose, an intravaginal sponge impregnated with 60 mg of medroxyprogesterone acetate (Progespon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) was inserted and at the fifth dose, ewes also received 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil). The intravaginal implant (GT) or sponge (GEm) was taken at the last FSHp dose. Subsequently, estrus detection and mating occurred every 12 hours. Seven days after the last FSH dose, embryos were collected by surgical uterine flushing. An ultrasound (Sonoscape S6®, Sonoscape, Yizhe Building, Yuquan Road Shenzhen, China) equipment coupled to a 7.5 MHz linear transducer (transrectal) was used to assess the follicular population on the progestagen insertion (D0), in the first superovulatory dose and for CL count immediately before embryo collection. Furthermore, regardless of the occurrence of premature regression of CL (PRCL), all ewes were collected. Normal and non-normal parametric data were evaluated by t-test and MannWhitney, respectively. Frequency data were evaluated by Fisher's exact test. It was considered as significant when P < 0.05. No differences (P > 0.05) were detected, between GT and GEm, in the follicular population at the day of the progestagen insertion (7.8 ± 2.6 vs. 6.0 ± 1.6) and the first FSHp dose (8.1 ± 2.6 vs. 8.9 ± 2.3). The number of CL were also similar (P > 0.05) between G1 (6.9 ± 5.1) and G2 (7.1 ± 3.1). The number of animals with PRCL in GT was 60% (6/10), greater than the 8.3% (1/12) found in GEm (P < 0.05). The number of collected structures (6.6 ± 4.3 vs. 0.6 ± 0.7; P < 0.01) and viable embryos (4.6 ± 3.9 vs. 0.3 ± 0.5; P < 0.01) were greater in GEm compared to GT. The recovery rate also differed between groups, being greater in GEm than GT (75.6% vs. 8.1%; P < 0.01). The greater PRCL rate in GT probably contributed to the smaller number of viable embryos. Thus, it is suggested the appliance indicated the GEm protocol for in vivo embryo production in Santa Ines sheep under tropical conditions. [Sincronização da emergência folicular para aumentar a produção in vivo de embriões ovinos da raça Santa Inês]. Resumo: O estudo objetivou a avaliação de dois protocolos hormonais para a sincronização da emergência da onda folicular na produção de embriões em ovinos da raça Santa Inês sob clima tropical. Foram utilizadas 22 ovelhas nulíparas da raça Santa Inês mantidas sob regime intensivo. Os animais de um grupo receberam um tratamento tradicional (GT; n=10) um dispositivo intravaginal contendo 0,33g de progesterona (Eazi-Breed CIDR® Ovinos e Caprinos, Zoetis Ltda, São Paulo, Brasil) e 0,24 mg de clorprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) por via intramuscular. As ovelhas do outro grupo tiveram a emergência da onda folicular sincronizada conforme proposto anteriormente (Balaro, M. Domestic Animal Endocrinology, v.54, p. 10-14, 2016) (GEm; n=12). A superovulação iniciou após 56 e 80 horas, no GT e GEm, respectivamente. Para ambos os grupos, foi utilizado 200 mg de FSHp (Folltropin®, União Química Farmacêutica Nacional S/A, São Paulo, Brasil) em seis doses decrescentes (25%/25%, 15%/15% e 10%/10%), a cada 12 horas. No GEm, no momento da aplicação da primeira dose de FSHp foi inserida uma esponja impregnada com 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil). Na aplicação da quinta dose de FSHp, as ovelhas também receberam 0,24 mg de clorprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e a esponja (GT) ou o implante intravaginal (GEm) foram retiradas ao administrar na última dose de FSHp. A detecção do estro e coberturas ocorreram, na sequência, a cada 12 horas. Após sete dias da última dose de FSH, os embriões foram coletados por meio da lavagem uterina cirúrgica. Utilizou-se o ultrassom (Sonoscape S6®, SonoScape, Yizhe Building, Yuquan Road, Shenzhen, China) acoplado a um transdutor linear de 7,5 MHz (via transretal) a fim de se avaliar a população folicular no dia do implante do progestágeno (D0), na primeira dose superovulatória e na contagem de CL antes da coleta de embriões. A ocorrência de regressão prematura de corpos lúteos (RPCL) também foi verificada. Os dados paramétricos normais e não-normais foram avaliados pelo teste t e Mann-Whitney, respectivamente. Dados de frequência foram avaliados pelo teste Exato de Fisher. Para ambos, considerou-se como significativo quando P<0,05. Não foram encontradas diferenças (P<0,05) na quantidade de folículos no dia da inserção do progestágeno (7,8 ± 2,6 vs. 6,0 ± 1,6) e na primeira dose de FSH (8,1 ± 2,6 vs. 8,9 ± 2,3). O número de CL contados no dia da coleta também não diferiu (P>0,05) entre GT (6,9 ± 5,1) e GEm (7,1 ± 3,1). O número de animais com RPCL no GT foi de 60% (6/10), superior (P<0,01) aos 8,3% (1/12) encontrados no GEm. O número de estruturas coletadas (6,6 ± 4,3 vs. 0,6 ± 0,7; P<0,01) e embriões viáveis (4,6 ± 3,9 vs. 0,3 ± 0,5; P<0,01) foram superiores no GEm comparado ao GT. A taxa de recuperação também diferiu entre os grupos experimentais, sendo superior no GEm (75,6% vs. 8,1%; P<0,01). A maior taxa de RPCL no GT contribuiu para o menor número de embriões viáveis obtidos. Assim, indica-se o GEm ao objetivar a produção de embriões em ovinos da raça Santa Inês manejados sob condições tropicais. MenosAbstract: This study aimed to evaluate two hormonal protocols for synchronization of follicular wave emergence on in vivo embryo production in Santa Ines sheep under tropical conditions. Twenty two nulliparous Santa Ines sheep, kept on intensive system, were used. Group one (GT, n = 10) received an intravaginal implant containing 0.33 g of progesterone (Eazi-Breed CIDR® Sheep and Goats, Zoetis Ltda, São Paulo, Brazil) for all period of hormonal protocol and 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) i.m.. Group two (GEm; n = 12) received the synchronization of the follicular wave emergence as proposed by Balaro et al. (2016). The superovulation started after 56 and 80 hours, from GT and GEm, respectively. For both groups, 200 mg of FSHp/per animal were administered (Folltropin®, National Pharmaceutical Chemistry Union S/A, São Paulo, Brazil) in six decreasing doses (25%/25%, 15%/15% and 10%/10%) every 12 hours. In GEm, at the first FSHp dose, an intravaginal sponge impregnated with 60 mg of medroxyprogesterone acetate (Progespon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) was inserted and at the fifth dose, ewes also received 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil). The intravaginal implant (GT) or sponge (GEm) was taken at the last FSHp dose. Subsequently, estrus detection and mating occurred every 12 hours. Seven days after the last FSH dose, embryos were collected by surgical uterine flushing. An ultrasound (Sonoscape S6®, Sono... Mostrar Tudo |
Palavras-Chave: |
Raça Santa Inês. |
Thesagro: |
Ovelha; Ovino; Reprodução animal; Superovulação. |
Thesaurus Nal: |
Ewes; Sheep; Superovulation. |
Categoria do assunto: |
-- |
URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/147095/1/cnpc-2016-Follicular.pdf
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Marc: |
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Group one (GT, n = 10) received an intravaginal implant containing 0.33 g of progesterone (Eazi-Breed CIDR® Sheep and Goats, Zoetis Ltda, São Paulo, Brazil) for all period of hormonal protocol and 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) i.m.. Group two (GEm; n = 12) received the synchronization of the follicular wave emergence as proposed by Balaro et al. (2016). The superovulation started after 56 and 80 hours, from GT and GEm, respectively. For both groups, 200 mg of FSHp/per animal were administered (Folltropin®, National Pharmaceutical Chemistry Union S/A, São Paulo, Brazil) in six decreasing doses (25%/25%, 15%/15% and 10%/10%) every 12 hours. In GEm, at the first FSHp dose, an intravaginal sponge impregnated with 60 mg of medroxyprogesterone acetate (Progespon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) was inserted and at the fifth dose, ewes also received 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil). The intravaginal implant (GT) or sponge (GEm) was taken at the last FSHp dose. Subsequently, estrus detection and mating occurred every 12 hours. Seven days after the last FSH dose, embryos were collected by surgical uterine flushing. An ultrasound (Sonoscape S6®, Sonoscape, Yizhe Building, Yuquan Road Shenzhen, China) equipment coupled to a 7.5 MHz linear transducer (transrectal) was used to assess the follicular population on the progestagen insertion (D0), in the first superovulatory dose and for CL count immediately before embryo collection. Furthermore, regardless of the occurrence of premature regression of CL (PRCL), all ewes were collected. Normal and non-normal parametric data were evaluated by t-test and MannWhitney, respectively. Frequency data were evaluated by Fisher's exact test. It was considered as significant when P < 0.05. No differences (P > 0.05) were detected, between GT and GEm, in the follicular population at the day of the progestagen insertion (7.8 ± 2.6 vs. 6.0 ± 1.6) and the first FSHp dose (8.1 ± 2.6 vs. 8.9 ± 2.3). The number of CL were also similar (P > 0.05) between G1 (6.9 ± 5.1) and G2 (7.1 ± 3.1). The number of animals with PRCL in GT was 60% (6/10), greater than the 8.3% (1/12) found in GEm (P < 0.05). The number of collected structures (6.6 ± 4.3 vs. 0.6 ± 0.7; P < 0.01) and viable embryos (4.6 ± 3.9 vs. 0.3 ± 0.5; P < 0.01) were greater in GEm compared to GT. The recovery rate also differed between groups, being greater in GEm than GT (75.6% vs. 8.1%; P < 0.01). The greater PRCL rate in GT probably contributed to the smaller number of viable embryos. Thus, it is suggested the appliance indicated the GEm protocol for in vivo embryo production in Santa Ines sheep under tropical conditions. [Sincronização da emergência folicular para aumentar a produção in vivo de embriões ovinos da raça Santa Inês]. Resumo: O estudo objetivou a avaliação de dois protocolos hormonais para a sincronização da emergência da onda folicular na produção de embriões em ovinos da raça Santa Inês sob clima tropical. Foram utilizadas 22 ovelhas nulíparas da raça Santa Inês mantidas sob regime intensivo. Os animais de um grupo receberam um tratamento tradicional (GT; n=10) um dispositivo intravaginal contendo 0,33g de progesterona (Eazi-Breed CIDR® Ovinos e Caprinos, Zoetis Ltda, São Paulo, Brasil) e 0,24 mg de clorprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) por via intramuscular. As ovelhas do outro grupo tiveram a emergência da onda folicular sincronizada conforme proposto anteriormente (Balaro, M. Domestic Animal Endocrinology, v.54, p. 10-14, 2016) (GEm; n=12). A superovulação iniciou após 56 e 80 horas, no GT e GEm, respectivamente. Para ambos os grupos, foi utilizado 200 mg de FSHp (Folltropin®, União Química Farmacêutica Nacional S/A, São Paulo, Brasil) em seis doses decrescentes (25%/25%, 15%/15% e 10%/10%), a cada 12 horas. No GEm, no momento da aplicação da primeira dose de FSHp foi inserida uma esponja impregnada com 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil). Na aplicação da quinta dose de FSHp, as ovelhas também receberam 0,24 mg de clorprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e a esponja (GT) ou o implante intravaginal (GEm) foram retiradas ao administrar na última dose de FSHp. A detecção do estro e coberturas ocorreram, na sequência, a cada 12 horas. Após sete dias da última dose de FSH, os embriões foram coletados por meio da lavagem uterina cirúrgica. Utilizou-se o ultrassom (Sonoscape S6®, SonoScape, Yizhe Building, Yuquan Road, Shenzhen, China) acoplado a um transdutor linear de 7,5 MHz (via transretal) a fim de se avaliar a população folicular no dia do implante do progestágeno (D0), na primeira dose superovulatória e na contagem de CL antes da coleta de embriões. A ocorrência de regressão prematura de corpos lúteos (RPCL) também foi verificada. Os dados paramétricos normais e não-normais foram avaliados pelo teste t e Mann-Whitney, respectivamente. Dados de frequência foram avaliados pelo teste Exato de Fisher. Para ambos, considerou-se como significativo quando P<0,05. Não foram encontradas diferenças (P<0,05) na quantidade de folículos no dia da inserção do progestágeno (7,8 ± 2,6 vs. 6,0 ± 1,6) e na primeira dose de FSH (8,1 ± 2,6 vs. 8,9 ± 2,3). O número de CL contados no dia da coleta também não diferiu (P>0,05) entre GT (6,9 ± 5,1) e GEm (7,1 ± 3,1). O número de animais com RPCL no GT foi de 60% (6/10), superior (P<0,01) aos 8,3% (1/12) encontrados no GEm. O número de estruturas coletadas (6,6 ± 4,3 vs. 0,6 ± 0,7; P<0,01) e embriões viáveis (4,6 ± 3,9 vs. 0,3 ± 0,5; P<0,01) foram superiores no GEm comparado ao GT. A taxa de recuperação também diferiu entre os grupos experimentais, sendo superior no GEm (75,6% vs. 8,1%; P<0,01). A maior taxa de RPCL no GT contribuiu para o menor número de embriões viáveis obtidos. Assim, indica-se o GEm ao objetivar a produção de embriões em ovinos da raça Santa Inês manejados sob condições tropicais. 650 $aEwes 650 $aSheep 650 $aSuperovulation 650 $aOvelha 650 $aOvino 650 $aReprodução animal 650 $aSuperovulação 653 $aRaça Santa Inês 700 1 $aBALARO, M. F. A. 700 1 $aPINTO, P. H. N. 700 1 $aSARAIVA, H. F. R. A. 700 1 $aBATISTA, R. I. T. P. 700 1 $aALFRADIQUE, V. A. P. 700 1 $aRIBEIRO, L. S. 700 1 $aFONSECA, J. F. da 700 1 $aUNGERFELD, R. 700 1 $aBRANDÃO, F. Z.
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62. | | ALFRADIQUE, V. A. P.; OLIVARES, C. C. S.; SOUZA-FABJAN, J. M. G. de; FONSECA, J. F. da; BATISTA, R. I. T. P.; BALARO, M. F. A.; SARAIVA, H. F. R. de A.; CÔRTES, L. R.; BRANDÃO, F. Z. Mini-percoll technique induces Similar capacitation features in domestic ruminant frozen-thawed spermatozoa regardless of the presence of heparin. Acta Scientiae Veterinariae, v. 47, Pub. 1707, p. 1-8, 2019.Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: B - 1 |
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63. | | CAMPOS JÚNIOR, P. H. de A.; MIRANDA, F. M. de; BATISTA, R. I. T. P.; ASSUNÇÃO, C. M.; PAIM, C. A. S.; SOUZA, F. A. M.; VIANA, J. H. M. Quantificação e morfometria folicular de camundongos (Mus musculus) provenientes de cruzamento outbred. In: SEMANA DE BIOLOGIA, 31.; MOSTRA DE PRODUÇÃO CIENTÍFICA, 14., 2008, Juiz de Fora. Anais... Juiz de Fora: UFJF, 2008. 1 CD.Tipo: Artigo em Anais de Congresso / Nota Técnica |
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64. | | PINTO, P. H. N.; BALARO, M. F. A.; ARASHIRO, E. K. N.; BATISTA, R. I. T. P.; OLIVEIRA, M. E. F.; BRAGANÇA, G. M.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. Produção in vivo de embriões ovinos. Revista Brasileira de Reprodução Animal, Belo Horizonte, v. 41, n. 1, p. 208-216, jan./mar. 2017.Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: B - 4 |
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65. | | PEREIRA, M. M.; BATISTA, R. I. T. P.; WOHLRES-VIANA, S.; BOITÉ, M. C.; SERAPIÃO, R. V.; POLISSENI, J.; IGUMA, L. T.; SÁ, W. F.; CAMARGO, L. S. A.; VIANA, J. H. M. Relação entre qualidade morfológica de complexos cumulus-oócitos bovinos e potencial de desenvolvimento in vitro. Acta Scientiae Veterinariae, v. 35, p. s1182, 2007. Supl. 3. Edição dos anais da 21ª Reunião Anual da Sociedade Brasileira de Tecnologia de Embriões, Salvador, 2007.Tipo: Resumo em Anais de Congresso |
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67. | | DIAS, J. H.; GONÇALVES, J. D.; ARRAIS, A. M.; BATISTA, R. I. T. P.; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; BASTOS, R.; SIQUEIRA, L. G. B.; OLIVEIRA, M. E. F.; FONSECA, J. F. da. Single dose of 300 IU hCG in the early luteal phase in superovulated ewes: Effects on corpora lutea, progesterone profile, and embryo recovery. Animal Reproduction Science, v. 247, 107101, 2022.Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: A - 2 |
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68. | | PUPIN, M. A. F.; VERGANI, G. B.; LIMA, M. S. D.; SILVA, K. de M.; RAMOS, A. F.; BATISTA, R. I. T. P.; FONSECA, J. F. da; OLIVEIRA, M. E. F. Do sheep breed effect influence superovulatory responses and embryos yields? Animal Reproduction, v. 17, n. 3, 2020. Edição dos Abstracts of the 34nd Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE), 2020 (online).Tipo: Resumo em Anais de Congresso |
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69. | | PUPIN, M. A. F.; VERGANI, G. B.; LIMA, M. S. D.; SILVA, K. de M.; RAMOS, A. F.; BATISTA, R. I. T. P.; FONSECA, J. F. da; OLIVEIRA, M. E. F. Do sheep breed effect influence superovulatory responses and embryos yields?. Animal Reproduction, v. 17, n. 3, 2020. Edição dos Abstracts of the 34nd Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE), 2020 (online).Tipo: Resumo em Anais de Congresso |
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70. | | FIGUEIRA, L. M.; ALVES, N. G.; BATISTA, R. I. T. P.; BRAIR, V. L.; LIMA, R. R.; OLIVEIRA, M. E. F.; FONSECA, J. F. da; SOUZA-FABJAN, J. M. G. Pregnancy rate after fixed-time transfer of cryopreserved embryos collected by non-surgical route in Lacaune sheep. Reproduction in Domestic Animals, v. 54, n. 11, p. 1493-496, Nov. 2019.Tipo: Nota Técnica/Nota Científica |
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Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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74. | | DIAS, J. H.; PUPIN, M. A.; DUARTE, G. S.; BRAIR, V. L.; PAULA, C. J. C. de; SOUSA, M. A. P. de; BATISTA, R. I. T. P.; SOUZA-FABJAN, J. G. S.; OLIVEIRA, M. E. F.; FONSECA, J. F. da. Successful transcervical uterine flushing can be performed without or reduced dose of oestradiol benzoate in cervical relaxation protocol in Dorper ewes. Reproduction in Domestic Animals, v. 55, n. 7, p. 844-850, Jul. 2020.Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: A - 2 |
Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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75. | | BRAGANÇA, G. M.; BATISTA, R. I. T. P.; SOUZA, C. V.; SANTOS, J. D. R.; ARASHIRO, E. K. N.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z.; SOUZA-FABJAN, J. M. G. The use of different progestin devices in ovarian stimulation protocol affects gene expression in sheep cumulus-oocyte complexes (COC). Animal Reprodroduction, v. 15, n. 3, p. 591, Jul./Sept. 2018. Abstracts A276E. Edição dos Proceedings of the 34rd Meeting of the Association of Embryo Transfer in Europe (AETE); Nantes, France, September 7th and 8th, 2018.Tipo: Resumo em Anais de Congresso |
Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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76. | | DIAS, J. H.; VERGANI, G. B.; LIMA, M. S. D.; TEIXEIRA, D. I. A.; SILVA, K. de M.; MONTEIRO, A. W. U.; BATISTA, R. I. T. P.; OLIVEIRA, M. E. F.; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; FONSECA, J. F. da. In vivo embryo production in Brazilian naturalized goats. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v. 43, n. 2, p. 504, abr./jun. 2019. Edição dos resumos do XXIII Congresso Brasileiro de Reprodução Animal, Gramado, RS, Brasil, 15 a 17 de maio 2019.Tipo: Resumo em Anais de Congresso |
Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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77. | | FIGUEIRA, L. M.; ALVES, N. G.; MAIA, A. L. R. e S.; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; BATISTA, R. I. T. P.; ARRAIS, A. M.; LIMA, R. R.; OLIVEIRA, M. E. F.; FONSECA, J. F. da. In vivo embryo production and recovery in lacaune ewes after imposing a superovulation treatment regimen is related to pFSH dose. Animal Reproduction Science, v. 223, e106625, Dec. 2020.Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: A - 2 |
Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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78. | | BATISTA, R. I. T. P.; RAPOSO, N. R. B.; CAMPOS JUNIOR, P. H. A.; PEREIRA, M. M.; CAMARGO, L. S. de A.; CARVALHO, B. C. de; GAMA, M. A. S. da; VIANA, J. H. M. Trans-10, cis-12 conjugated linoleic acid reduces neutral lipid content and may affect cryotolerance of in vitro-produced crossbred bovine embryos. Journal of Animal Science and Biotechnology, v. 5, n. 1, 2014. 8 p.Tipo: Artigo em Periódico Indexado | Circulação/Nível: B - 5 |
Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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79. | | SOUZA-FABJAN, J. M. G.; FIGUEIRA, L. M.; ALVES, N. G.; BATISTA, R. I. T. P.; SOUZA, L. C.; ARRAIS, A. A.; SILVA, C. F.; MORAIS, M. C. C.; FONSECA, J. F. da. Transcervical embryo recovery in Lacaune ewes superovulated with different doses of FSH. Animal Reprodroduction, v. 15, n. 3, p. 363, Jul./Sept. 2018. Abstracts A136E. Edição dos Proceedings of the 34rd Meeting of the Association of Embryo Transfer in Europe (AETE); Nantes, France, September 7th and 8th, 2018.Tipo: Resumo em Anais de Congresso |
Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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80. | | BOITÉ, M. C.; NOGUEIRA, L. A. G.; PEREIRA, M. M.; BATISTA, R. I. T. P.; VIANA, S. W.; POLISSENI, J.; MOTA, G. B.; SERAPIÃO, R. V.; CARVALHO, B. C.; IGUMA, L. T.; SÁ, W. F.; VIANA, J. H. M.; CAMARGO, L. S. A. Avaliação da capacidade de desidratação e reidratação de embriões bovinos cultivados em diferentes meios. In: SEMANA DE BIOLOGIA, 30., 2007, Juiz de Fora. O mundo se tornou pequeno para você mas você não é grande para o mundo: anais. Juiz de Fora: DACBIO/UFJF, 2007. p. 117-123.Tipo: Artigo em Anais de Congresso / Nota Técnica |
Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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Registros recuperados : 102 | |
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