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| Registros recuperados : 298 | |
| 262. |  | LANGE, C. C.; BRITO, M. A. V. P. e; BRITO, J. R. F.; ARCURI, E. F.; SOUZA, G. N. de; MACHADO, M. A.; DOMINGUES, R.; SALIMENA, A. P. S. Uso de PCR e sequenciamento do rDNA 16S para identificação de bactérias do gênero Staphylococcus isoladas de mastite bovina. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 31, n. 1, p. 36-40, 2011.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 265. | | SOUZA, G. N. de; SILVA, M. R.; BRITO, M. A. V. P. e; LANGE, C. C.; HYLARIO, S. M.; FARIA, L. C. de; PIFANO, N. K.; CASARIL, F. A. Variação da contagem de células somáticas de rebanhos de acordo com o isolamento de Staphylococcus aureus e Streptococcus agalactiae em amostras de leite do tanque de expansão. In: CONGRESSO INTERNACIONAL DO LEITE, 12.; WORKSHOP DE POLÍTICAS PÚBLICAS, 12.; SIMPÓSIO DE SUSTENTABILIDADE DA ATIVIDADE LEITEIRA, 13., 2013, Porto Velho. Anais... Brasília, DF: Embrapa, 2013. 3 p. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 266. | | JUNIOR, J. E. F. L.; SOUZA, G. N. de; LANGE, C. C.; BRITO, M. A. V. P. e; SILVA, M. A. S.; FONSECA, R. G.; SILVEIRA, R. H.; SILVA, Y. A.; SANTOS, F. R. Variação da contagem total de bactérias em quartos mamários de bovinos de acordo com patógenos da mastite. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE MICROBIOLOGIA, 25., 2009, Ipojuca. Anais... Ipojuca: Sociedade Brasileira de Microbiologia, 2009.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 267. | | SOUZA, G. N. de; SILVA, M. R.; BRITO, M. A. V. P. e; LANGE, C. C.; HYLARIO, S. M.; FARIA, L. S. de; PIFANO, N. C.; CASARIL, F. A. Variação na produção de leite de rebanhos bovinos da raça holandesa de acordo com o isolamento de Staphylococcus aureus e Streptococcus agalactiae em amostras de leite do tanque de expansão. In: CONGRESSO INTERNACIONAL DO LEITE, 12.; WORKSHOP DE POLÍTICAS PÚBLICAS, 12.; SIMPÓSIO DE SUSTENTABILIDADE DA ATIVIDADE LEITEIRA, 13., 2013, Porto Velho. Anais... Brasília, DF: Embrapa, 2013. 3 p. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 268. | | MENDONÇA, J. F. M; MONTEIRO, D. L.; BARBOSA, B. I. M.; MENDONCA, L. C.; BRITO, M. A. V. P. e; LANGE, C. C.; GUIMARAES, A. S.; SOUZA, G. N. de. Variação da sensibilidade do exame microbiológico para identificação de Staphylococcus aureus em vacas individuais de um rebanho holandês infectado naturalmente por Streptococcus agalactiae e Staphylococcus aureus In: SIMPÓSIO DE QUALIDADE DO LEITE, 3., 2016, Jaboticabal. Resumos. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 269. | | CHENARD, M. G.; VALLE, M. D.; CUNHA, I. M. da; ALENCAR, N. X. de; LESSA, D. A. B.; SOUZA, G. N. de; CUNHA, N. C. da; CARVALHO, V. de A. N.; CALDAS, S. A.; HELAYEL, M. A. Validation of a portable glucose meter in blood glucose measurement in normoglycemic goats induced to hypoglycemia and hyperglycemia. Small Ruminant Research, v. 214, 106741, 2022.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 270. | | SOUZA, G. N. de; PEGORARO, L. M. C.; WEISSHEIMER, C. F.; FISCHER, G.; DELLAGOSTIN, O.; BIALVES, T. S.; GINDRI, P. C.; LUCAS, R. M.; MÜLLER, L.; WEILLER, O. H. Variation of seroprevalence of bovine viral diarrhea (BVD), infectious bovine rhinotracheitis (IBR), leptospirosis and neosporosis in dairy herds from different regions of Rio Grande do Sul. Reproduction in Domestic Animals, v. 14, n. 3, p. 858, jul/sept, 2017. Apresentado: Proceedings of the 31st Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Cabo de Santo
Agostinho, PE, Brazil, August 17th to 19th, 2017. Abstracts.| Biblioteca(s): Embrapa Clima Temperado. |
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| 271. | | GUIMARAES, A. S.; LANGE, C. C.; O'CONNOR, A. M.; CASTANHEIRA, R. G.; HERRMANN, G. P.; VARGAS, A. C.; LIBARDONI, F.; MOSQUEIRA, V. C. F.; SOUZA, G. N. de; MENDONCA, L. C.; BRITO, M. A. V. P. e; GERN, J. C.; BRANDAO, H. de M. Cloxacillin nanostructures formulation for control of clinical bovine keratoconjunctivitis. In: Simpósio Embrapa LabEx EUA de Sanidade Animal, 2., 2012, Brasília. Proceedings... Brasília: Embrapa Estudos e Capacitação, 2012 p. 62| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 272. | | SOUZA, F. N.; CUNHA, A. F.; ROSA, D. L. S. O.; BRITO, M. A. V. P. e; GUIMARAES, A. S.; MENDONCA, L. C.; SOUZA, G. N. de; LAGE, A. P.; BLAGITZ, M. G.; LIBERA, A. M. M. P. D.; HEINEMANN, M. B.; CERQUEIRA, M. M. O. P. Somatic cell count and mastitis pathogen detection in composite and single or duplicate quarter milk samples. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 36, n. 9, p. 811-818, 2016.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 273. | | SILVA, M. R.; GUIMARÃES, M. D. C.; OLIVEIRA, V. M. de; COSTA, R. R.; ABI-ZAID, K. C. F.; ARAUJO, F. R.; SOUZA, G. N. de; REIS, R. A.; HYLARIO, S. M.; AMARAL, C. M.; SUFFYS, P. N.; ROCHA, A. DA SILVA. Identification of Mycobacterium tuberculosis complex based on amplification and sequencing of the oxyR pseudogene from stored Ziehl-Neelsen-stained sputum smears in Brazil. In: CONGRESSO INTERNACIONAL DO LEITE, 11.; WORKSHOP DE POLÍTICAS PÚBLICAS, 11.; SIMPÓSIO DE SUSTENTABILIDADE DA ATIVIDADE LEITEIRA, 12., 2012, Goiânia. Anais... Juiz de Fora: Embrapa Gado de Leite, 2012.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 274. | | GERN, J. C.; GUIMARAES, A. S.; BASSOLI, A. E. G.; HERRMANN, G. P.; VARGAS, A. C.; LIBARDONI, F.; MARTINI, C. L.; BRITO, M. A. V. P. e; LANGE, C. C.; SOUZA, G. N. de; SANTOS, F. F.; SILVA, S. R. da; SILVA, M. A. S.; MOSQUIERA, V. C. F.; BRANDAO, H. de M. Avaliação in vitro de cloxacilina nanoencapsulada contra diferentes isolados de moraxella. In: WORKSHOP DA REDE DE NANOTECNOLOGIA APLICADA AO AGRONEGÓCIO, 7.; ESCOLA DE NANOTECNOLOGIA, 3., 2013, São Carlos, SP. Anais... São Carlos, SP: Embrapa Instrumentação, 2013. p. 485-487| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 275. | | GERN, J. C.; GUIMARAES, A. S.; BASSOLI, A. E.; HERMANN, G. P.; VARGAS, A. C. DE; LIBARDONI, F.; MARTINI, C.; BRITO, M.; LANGE, C. C.; SOUZA, G. N. de; SANTOS, F. F. DOS; SILVA, S. DA; SILVA, M. A. S.; MOSQUEIRA, V. C. F.; BRANDAO, H. de M. Avaliação in vitro de cloxacilina nanoencapsulada contra diferentes isolados de moraxella. Engormix, 20 dez. 2013.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 276. | | CRUZ, A. P. M.; AQUINO, M. H. C. de; HELAYAEL, M. J. S. A.; SILVA, M. R.; RIBEIRO, J. B.; HOTT, M. C.; MAGALHAES JUNIOR, W. C. P. de; MENDONÇA, J. F. M. de; CASTRO, F. de F. A. de; SOUZA, G. N. de. Aplicação do SIG à sanidade animal: caso da anemia infecciosa equina. In: HOTT, M. C.; ANDRADE, R. G.; MAGALHAES JUNIOR, W. C. P. de (org.). Geotecnologias: aplicações na cadeia produtiva do leite. Ponta Grossa: Atena, 2022. p. 113-118.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 277. | | MOREIRA, M. S. de P.; RIBEIRO, A. C. de C. L.; CARVALHO, A. da C.; SANTOS, C. A. dos; ARCURI, E. F.; DINIZ, F. H.; SOUZA, G. N. de; NUNES, J. B.; BRITO, J. R. F.; MORAES, L. C. D. de; BRITO, M. A. V. P. e; ZOCCAL, R. Kit Embrapa de ordenha manual. Juiz de Fora: Embrapa Gado de Leite, 2007. 20 p.| Biblioteca(s): Embrapa Agropecuária Oeste; Embrapa Amapá; Embrapa Amazônia Ocidental; Embrapa Amazônia Oriental; Embrapa Caprinos e Ovinos; Embrapa Gado de Leite; Embrapa Meio Norte / UEP-Parnaíba; Embrapa Meio-Norte; Embrapa Pantanal; Embrapa Pecuária Sul; Embrapa Rondônia; Embrapa Roraima; Embrapa Semiárido; Embrapa Tabuleiros Costeiros; Embrapa Unidades Centrais. MenosEmbrapa Agropecuária Oeste; Embrapa Amapá; Embrapa Amazônia Ocidental; Embrapa Amazônia Oriental; Embrapa Caprinos e Ovinos; Embrapa Gado de Leite; Embrapa Meio Norte / UEP-Parnaíba; Embrapa Meio-Norte; Embrapa Pantanal; Embrapa Pecuária Sul... Mostrar Todas |
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| 278. | | GUIMARAES, A. S.; LANGE, C. C.; O'CONNOR, A. M.; RAPOSO, N. R. B.; SILVA, S. R.; BRANDI, R. R.; HERRMANN, G. P.; VARGAS, A. C.; LIBARDONI, F.; BRITO, M. A. V. P. e; SOUZA, G. N. de; BRANDAO, H. de M. Evaluation of a nanopropolis for control of clinical bovine keratoconjunctivitis. In: Simpósio Embrapa LabEx EUA de Sanidade Animal, 2., 2012, Brasília. Proceedings... Brasília: Embrapa Estudos e Capacitação, 2012 p. 60| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 279. | | MORAIS, A. C. N. DE; PIRES, D. R.; MACHADO, L. DOS S.; AZEVEDO, Y. R.; MENDONÇA, J. F. M.; FERREIRA, R. L.; SOUZA, G. N. de; CUNHA, N. C. DA; BARRETO, M. L.; PEREIRA, V. L. DE A.; NASCIMENTO, E. R. DO. Detection of Mollicutes species from brazilian dairy cattle by molecular techniques. In: CONGRESO LATINOAMERICANO DE MICROBIOLOGIA, 24., 2018, Santiago, Chile. Resúmenes... Santiago: ALAM, 2018. p. 544| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 280. | | CASTRO, C. R. T. de; VICENTINI, N. M.; LANGE, C. C.; DINIZ, F. H.; GAMA, M. A. S. da; MARTINS, C. E.; LOPES, F. C. F.; SOUZA, G. N. de; OTENIO, M. H.; SOBRAL, D.; COSTA, R. G. B.; REIS, E. S. dos; ARAÚJO, A. L. R.; MAGALHAES JUNIOR, W. C. P. de; PIRES, M. de F. A. Produção, qualidade microbiológica e aspectos nutricionais do queijo artesanal de Carvalhos-MG. Juiz de Fora: Embrapa Gado de Leite, 2023. 54 p. (Embrapa Gado de Leite. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 48). OSD 1, ODS 2, ODS 3, ODS 8, ODS 10.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite; Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| Registros recuperados : 298 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Gado de Leite. |
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Data corrente: |
13/02/2017 |
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Data da última atualização: |
30/01/2023 |
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Tipo da produção científica: |
Artigo em Periódico Indexado |
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Circulação/Nível: |
A - 2 |
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Autoria: |
SOUZA, F. N.; CUNHA, A. F.; ROSA, D. L. S. O.; BRITO, M. A. V. P. e; GUIMARAES, A. S.; MENDONCA, L. C.; SOUZA, G. N. de; LAGE, A. P.; BLAGITZ, M. G.; LIBERA, A. M. M. P. D.; HEINEMANN, M. B.; CERQUEIRA, M. M. O. P. |
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Afiliação: |
Fernando N. Souza, UFMG; Adriano F. Cunha, UFMG; Dalila L. S. O. Rosa, UFMG; MARIA APARECIDA V PAIVA E BRITO, CNPGL; ALESSANDRO DE SA GUIMARAES, CNPGL; LETICIA CALDAS MENDONCA, CNPGL; GUILHERME NUNES DE SOUZA, CNPGL; Andrey P. Lage, UFMG; Maiara G. Blagitz, USP; Alice M. M. P. Della Libera, USP; Marcos B. Heinemann, FMVZ/USP; Mônica M.O.P. Cerqueira, UFMG. |
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Título: |
Somatic cell count and mastitis pathogen detection in composite and single or duplicate quarter milk samples. |
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Ano de publicação: |
2016 |
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Fonte/Imprenta: |
Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 36, n. 9, p. 811-818, 2016. |
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Idioma: |
Inglês |
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Conteúdo: |
Abstract The most acceptable criteria for diagnosing bovine intramammary infections include results of bacteriological culture and measures of inflammation. Therefore, information on the diagnostic characteristics of the procedures used to identify infected quarters is required. Thus, this study was designed to evaluate a set of criteria to classify the infectious status of an udder at the quarter (single and duplicate milk samples) and cow (composite milk sample) levels, and to compare the infectious status with somatic cell counts (SCCs) of the samples. Here, the SCC thresholds determined by receiver operating characteristic curve analysis had a higher Youden index using mammary quarter duplicate milk samples as the gold standard for testing compared with single quarter and composite milk samples, especially for samples for which at least one of the duplicates was microbiologically positive, regardless of the mastitis pathogen isolated. The kappa coefficient for bacteriological results of the single quarter milk samples (single S1 and S2) was 0.85+0.019, indicating that single quarter milk sampling can be useful in mastitis control programs. Therefore, the use of composite milk samples to detect mastitis pathogens may be limited to the detection of major pathogens, given their predictive values. Thus, our findings suggest that the milk SCCs and microbiological examinations, although regarded as the most reliable indicators of ongoing mastitis, should be used in an integrated manner in mastitis control programs. Furthermore, the accuracy of single, duplicate and composite microbiological analyses to diagnosis mastitis should be considered for its implications in mastitis control strategies. MenosAbstract The most acceptable criteria for diagnosing bovine intramammary infections include results of bacteriological culture and measures of inflammation. Therefore, information on the diagnostic characteristics of the procedures used to identify infected quarters is required. Thus, this study was designed to evaluate a set of criteria to classify the infectious status of an udder at the quarter (single and duplicate milk samples) and cow (composite milk sample) levels, and to compare the infectious status with somatic cell counts (SCCs) of the samples. Here, the SCC thresholds determined by receiver operating characteristic curve analysis had a higher Youden index using mammary quarter duplicate milk samples as the gold standard for testing compared with single quarter and composite milk samples, especially for samples for which at least one of the duplicates was microbiologically positive, regardless of the mastitis pathogen isolated. The kappa coefficient for bacteriological results of the single quarter milk samples (single S1 and S2) was 0.85+0.019, indicating that single quarter milk sampling can be useful in mastitis control programs. Therefore, the use of composite milk samples to detect mastitis pathogens may be limited to the detection of major pathogens, given their predictive values. Thus, our findings suggest that the milk SCCs and microbiological examinations, although regarded as the most reliable indicators of ongoing mastitis, should be used in an integrat... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Dairy cow; Intramammary infection; Sensitivity; Specificity; Udder health status. |
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Thesaurus NAL: |
mastitis; somatic cell count. |
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Categoria do assunto: |
L Ciência Animal e Produtos de Origem Animal |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/155465/1/Cnpgl-2016-PesqVetBras-Somatic.pdf
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Marc: |
LEADER 02723naa a2200337 a 4500
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245 $aSomatic cell count and mastitis pathogen detection in composite and single or duplicate quarter milk samples.$h[electronic resource]
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520 $aAbstract The most acceptable criteria for diagnosing bovine intramammary infections include results of bacteriological culture and measures of inflammation. Therefore, information on the diagnostic characteristics of the procedures used to identify infected quarters is required. Thus, this study was designed to evaluate a set of criteria to classify the infectious status of an udder at the quarter (single and duplicate milk samples) and cow (composite milk sample) levels, and to compare the infectious status with somatic cell counts (SCCs) of the samples. Here, the SCC thresholds determined by receiver operating characteristic curve analysis had a higher Youden index using mammary quarter duplicate milk samples as the gold standard for testing compared with single quarter and composite milk samples, especially for samples for which at least one of the duplicates was microbiologically positive, regardless of the mastitis pathogen isolated. The kappa coefficient for bacteriological results of the single quarter milk samples (single S1 and S2) was 0.85+0.019, indicating that single quarter milk sampling can be useful in mastitis control programs. Therefore, the use of composite milk samples to detect mastitis pathogens may be limited to the detection of major pathogens, given their predictive values. Thus, our findings suggest that the milk SCCs and microbiological examinations, although regarded as the most reliable indicators of ongoing mastitis, should be used in an integrated manner in mastitis control programs. Furthermore, the accuracy of single, duplicate and composite microbiological analyses to diagnosis mastitis should be considered for its implications in mastitis control strategies.
650 $amastitis
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773 $tPesquisa Veterinária Brasileira$gv. 36, n. 9, p. 811-818, 2016.
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Embrapa Gado de Leite (CNPGL) |
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