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| Registros recuperados : 79 | |
| 61. |  | CARVALHEIRA, L. R.; JASMIN, J.; SANTOS, G. B.; GUIMARÃES, C. R.; ALVES, B. R. C.; MACHADO, F. S.; CAMPOS, M. M.; RODRIGUES, A. L. R.; NOGUEIRA, L. A. G.; CARVALHO, B. C. The effect of diets with different levels of degradable and undegradable protein in rumen on apoptosis in oocyte and in cumulus-oophurus cells of Girolando cows Animal Reproduction, v. 12, n. 3, 2015. Edição dos proceedings do 29º Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society, 2015, Gramado.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 62. | | SOUZA-FABJAN, J. M. G.; ROSA, R. M. da; BALARO, M. F. A.; PINTO, P. H. N.; SANTOS, G. B. dos; ARASHIRO, E. K. N.; FONSECA, J. F. da; UNGERFELD, R.; BRANDÃO, F. Z. Effect of different hormonal combinations on follicular wave emergence and superovulatory response in sheep. Theriogenology, v. 103, p. 24-29, Nov. 2017.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 63. | | CARVALHEIRA, L. de R.; SANTOS, G. B. dos; GUIMARÃES, C. R.; RODRIGUES, A. L. R.; MACHADO, F. S.; CAMPOS, M. M.; VARGAS, M. W.; NOGUEIRA, L. A. G.; CARVALHO, B. C. de. Efeito de diferentes níveis de proteína degradável e não degradável no rúmen sobre a concentração de nitrogênio ureico no plasma, fluido folicular e vialibildade de oócitos em vacas Girolando (Bos taurus taurus x Bos taurus indicus) em lactação In: CONGRESSO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL, 21., 2015, Belo Horizonte. Anais... Belo Horizonte: CBRA, 2015.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 64. | | SOUZA-FABJAN, J. M. G.; BRAGANÇA, G. M.; RIBEIRO, L. dos S.; PINTO, P. H. N.; SANTOS, G. B. dos; BRAIR, V. L.; OLIVEIRA, I. C.; BATISTA, R. I. T. P.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. Efeito de diferentes doses de protocolos hormonais para superestimulação ovariana na população folicular de ovelhas da raça Santa Inês. Revista Brasileira de Reprodução Animal, Belo Horizonte, v. 41, n. 1, p. 468, jan./mar. 2017. Edição dos anais do XXII Congresso Brasileiro de Reprodução Animal (CBRA), Santos, SP, Brasil, maio 2017.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 65. | | FIALHO, A. R.; AMABILE, R. F.; MELO, J. V. P.; SANTOS, G. B. C.; CARVALHO, C. G. P.; SOARES, K. C. dos S.; SANTOS, M. A.; FAGIOLI, M.; AMARAL, U. do; BRIGE, F. A. A. Desempenho agronômico de genótipos de girassol em diferentes ambientes do cerrado do Distrito Federal. In: REUNIÃO NACIONAL DE PESQUISA DE GIRASSOL, 24.; SIMPÓSIO NACIONAL SOBRE A CULTURA DO GIRASSOL, 12., 2023, Campo Verde. Anais... Londrina: Embrapa Soja, 2023. (Embrapa Soja. Eventos técnicos & científicos, 2). RNPG, 2023. Editado por Regina Maria Villas Bôas de Campos Leite, Hugo Soares Kern. p. 94-97. Título em inglês: Morphoagronomic evaluation of sunflower genotypes in cerrado environments of the Federal District.| Biblioteca(s): Embrapa Cerrados; Embrapa Soja. |
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| 66. | | PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; LEITE, C. R.; SANTOS, G. B.; ALFRANDIQUE, V. A. P.; GONÇALVES, L. H. S.; BALARO, M. F. A.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. Color Doppler ultrasound as a substitute to laparoscopy for the CL count in superovulated sheep. Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 473, Jul./Sept. 2016. Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain,...| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 67. | | PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; BALARO, M. F. A.; ARASHIRO, E. K. N.; SANTOS, G. B.; SOUZA, G. N. de; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; FONSECA, J. F. da; BRANDÃO, F. Z. Colour-Doppler ultrasound imaging as a laparoscopy substitute to count corpora lutea in superovulated sheep. Reproduction in Domestic Animals, v. 53, n. 1, p. 266-269, Feb. 2018.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos; Embrapa Gado de Leite. |
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| 68. | | PROENCA, C. E. B.; DIAS, T.; RIBEIRO, J. F.; SIMON, M. F.; CARDOSO, C. F. R.; GOMES, S. M.; MIRANDA, J. d' A. R. de; POTZERNHEIM, M. C. L.; SANTOS, G. B. dos; ROSA, L. O. C. Lacunas no conhecimento botanico do bioma cerrado. In: CONGRESSO NACIONAL DE BOTANICA, 50., 1999, Blumenau. Programa e resumos... Blumenau: Sociedade Botanica do Brasil, 1999. p. 165.| Biblioteca(s): Embrapa Cerrados. |
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| 69. | | MELO, J. V. P.; AMABILE, R. F.; FIALHO, A. R.; CARVALHO, C. G. P.; SANTOS, G. B. C.; SANTOS, M. A.; SOARES, K. C. dos S.; AMARAL, U. do; FAGIOLI, M. Seleção de híbridos de girassol no cerrado via análise de componentes principais. In: REUNIÃO NACIONAL DE PESQUISA DE GIRASSOL, 24.; SIMPÓSIO NACIONAL SOBRE A CULTURA DO GIRASSOL, 12., 2023, Campo Verde. Anais... Londrina: Embrapa Soja, 2023. (Embrapa Soja. Eventos técnicos & científicos, 2). RNPG, 2023. Editado por Regina Maria Villas Bôas de Campos Leite, Hugo Soares Kern. p. 80-84. Título em inglês: Selection of sunflower hybrids in the cerrado via principal component analysis.| Biblioteca(s): Embrapa Cerrados; Embrapa Soja. |
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| 70. | | BRAIR, V. L.; PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; SANTOS, G. B. dos; BALARO, M. F. A.; SOUZA-FABJAN, J. M. G.; FONSECA, J. F. da; SANTOS, A. F. dos. Seleção de ovelhas doadoras de embrião por aplicação de eCG. Revista Brasileira de Reprodução Animal, Belo Horizonte, v. 41, n. 1, p. 486, jan./mar. 2017. Edição dos anais do XXII Congresso Brasileiro de Reprodução Animal (CBRA), Santos, SP, Brasil, maio 2017.| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 71. | | FONSECA, J. F. da; MAIA, A. L. R. S.; BRANDÃO, F. Z.; BALARO, M. F. A.; SANTOS, G. B.; FABJAN, J. M. G. S.; BATISTA, R. I. T. P.; FACO, O. Recovery of reproductive activity and fertility of Saanen goats affected by hydrometra after cloprostenol treatment and estrus induction during the non-breeding season (preliminary data). Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 584, Jul./Sept. 2016. Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain,...| Biblioteca(s): Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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| 72. | | SANTOS, G. B.; GOMES, I. M. M.; SILVEIRA, J. A. G.; PIRES, L. C. S. R.; AZEVEDO, S. S.; ANTONELLI, A. C.; RIBEIRO, M. F. B.; HORTA, M. C. Tristeza parasitária em bovinos do semiárido pernambucano. Pesquisa Veterinária Brasileira, Rio de Janeiro, v. 37, n. 1, p. 1-7, jan. 2017.| Biblioteca(s): Embrapa Unidades Centrais. |
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| 73. | | SANTOS, G. B. M.; DIONISIO, A. P.; SILVA, M. F. G.; ABREU, F. A. P. de; PINTO, C. O.; SOUZA, A. C. R. de; WURLITZER, N. J.; BORGES, M. de F.; GARRUTI, D. dos S.; ARAUJO, I. M. da S. Suco clarificado de yacon: processo, caracterização e aceitabilidade de bebidas mistas formuladas com suco de caju. Fortaleza: Embrapa Agroindústria Tropical, 2018. 24 p. (Embrapa Agroindústria Tropical. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 176).| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria Tropical. |
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| 74. | | NASCIMENTO, E. de O.; SANTOS, K. C. L. dos; SANTOS, G. B. dos; OLIVEIRA, D. R. de; SILVA, R. L. de S. da; ALMEIDA, F. N.; CARVALHO, B. C. de; ARBEX, W. A. Visão computacional aplicada à pecuária de precisão para determinação da condição corporal em bovinos. In: WORKSHOP DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA EMBRAPA GADO DE LEITE, 16., 2015, Juiz de Fora, MG Anais... Juiz de Fora: Embrapa Gado de Leite, 2015 1 CD-ROM. (Embrapa Gado de Leite. Documentos, 185.). 2 p.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 75. | | SILVA, S. A. T.; CASTRO, V. R.; MARTINS, P. C.; LIMA, J. A. M.; TOMICH, T. R.; PEREIRA, L. G. R.; PAIVA, C. A. V.; MACHADO, F. S.; ALVES, B. R. C.; SANTOS, G. B. dos; COELHO, S. G.; CAMPOS, M. M. Avaliação da idade e peso a puberdade de novilhas F1 Holandês x Gir com diferentes fenótipos de consumo alimentar residual. In: WORKSHOP DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA EMBRAPA GADO DE LEITE, 17., 2016, Juiz de Fora. Anais... Juiz de Fora: Embrapa Gado de Leite, 2016. 1 CD-ROM. (Embrapa Gado de Leite. Documentos, 186). 1 p.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Leite. |
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| 76. | | LIRA, S. M.; DIONISIO, A. P.; HOLANDA, M. O.; MARQUES, C. G.; SILVA, G. S. DA; CORREA, L. C.; SANTOS, G. B. M.; ABREU, F. A. P. de; MAGALHÃES, F. E. A.; REBOUÇAS, E. DE L.; GUEDES, J. A. C.; OLIVEIRA, D. F. DE; OLIVEIRA, D. F. DE; GUEDES, M. I. F.; ZOCOLO, G. J. Metabolic profile of pitaya (Hylocereus polyrhizus (F.A.C. Weber) Britton & Rose) by UPLC-QTOF-MSE and assessment of its toxicity and anxiolytic-like effect in adult zebrafish Food Research International, Amsterdam, v. 127, artigo 108701, 10 p., Jan. 2020| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria Tropical. |
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| 77. | | LIRA, S. M.; HOLANDA, M. O.; SILVA, J. Y. G. DA; MARQUES, C. G.; COELHO, L. C.; LIMA, C. L. S.; COSTA, J. T. G.; DANTAS, J. B.; MACIEL, G. L.; SILVA, G. S. DA; SANTOS, G. B. M.; ZOCOLO, G. J.; DIONISIO, A. P.; GUEDES, M. I. F. Pitaya [Hylocereus polyrhizus (F.A.C. Weber) Britton & Rose] effect on glycemia and oxidative stress in aloxan-induced diabetic mice. Food Science and Technology, v. 43, e56822, 2023. 9 p.| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria Tropical; Embrapa Soja. |
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| 78. | | SANTOS, G. B. M.; DIONISIO, A. P.; MAGALHÃES, H. C. R.; ABREU, F. A. P. de; LIRA, S. M.; LIMA, A. C. V. DE; SILVA, G. S. DA; GUEDES, J. A. C.; ARAUJO, I. M. da S.; ARTUR, A. G.; PONTES, D. F.; ZOCOLO, G. J. Effects of processing on the chemical, physicochemical, enzymatic, and volatile metabolic composition of pitaya (Hylocereus polyrhizus (F.A.C. Weber) Britton & Rose). Food Research International, Amsterdam, v. 127, artigo 108710, 9 p., Jan. 2020.| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria Tropical. |
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| 79. | | LIRA, S. M.; COELHO, L. C.; MARQUES, C. G.; HOLANDA, M. O.; DANTAS, J. B.; LIMA, A. C. V. DE; SANTOS, G. B. M.; SILVA, G. S. DA; ABREU, F. A. P. de; DIONISIO, A. P.; ZOCOLO, G. J.; GUEDES, M. I. F. Caracterização fitoquímica dos extratos bruto e aquoso da polpa e da casca de pitaya vermelha (Hylocereus polyrhizus). In: MATOS, R. R. S. DA S.; A., H. A. F. DE; M., N. A. F. (Org.). A face multidisciplinar das ciências agrárias. Ponta Grossa: Atena, 2019. Cap. 8 p. 67-78| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria Tropical. |
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| Registros recuperados : 79 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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Data corrente: |
05/09/2016 |
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Data da última atualização: |
23/09/2019 |
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Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
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Autoria: |
SARAIVA, H. F. R. A.; PINTO, P. H. N.; BRAGANÇA, G. M.; SANTOS, G. B.; RIBEIRO, L. S.; BATISTA, R. I. T. P.; COSENTINO, I. O.; FABJAN, J. M. G. S.; FONSECA, J. F. da; BRANDAO, F. Z. |
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Afiliação: |
Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; UFF - Niterói, RJ; JEFERSON FERREIRA DA FONSECA, CNPC; UFF - Niterói, RJ. |
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Título: |
Follicular population on the estimation of the superovulatory response in Santa Ines sheep. |
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Ano de publicação: |
2016 |
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Fonte/Imprenta: |
Animal Reproduction, v. 13, n. 3, p. 532, Jul./Sept. 2016. |
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Idioma: |
Inglês |
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Notas: |
Proceedings of the 30th Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Foz do Iguaçu, PR, Brazil, August 25th to 27th, 2016, and 32nd Meeting of the European Embryo Transfer Association (AETE); Barcelona, Spain, September 9th and 10th, 2016. |
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Conteúdo: |
Abstract: The aim was to verify the correlation between follicular population count, superovulatory response and the recovery of viable structures in the in vivo production of sheep embryos. Twenty-five nulliparous Santa Inês ewes (11.9 ± 1.1 months old, body score of 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG(Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brazil) were given. Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered.The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg). At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brazil) were administered. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. An ultrasound equipment (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) coupled to a 7,5 MHz linear transducer, by transrectal via was used for the quantification of the follicular population (PF) in two moments: at the beginning of the estrus synchronization (PFESTRUSBASE) and at the time of the first FSH dose (PFFSH-1). Embryo collections were carried out by surgical method, six to seven days after mating, and the viable structures (VS) quantified. The number of CLs (NCLs) was determined by laparoscopy previously to the embryo recovery. The PFESTRUSBASE and PFFSH-1 variables were compared with the NCLs and EV through the Pearson's correlation coefficient and Simple Linear Regression Analysis. For all tests, P < 0.05 was considered as statistically significant. An average of 7.5 ± 4.8 CLs and 4.0 ± 3.5 viable structures were obtained per donor. Significant correlations, medians and low, were found between: PFESTRUSBASE and NCLs (r = 0.45; r2 = 0.17; P < 0.05); PFFSH-1 and NCLs (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05); PFESTRUSBASE and VS (r = 0.55; r2 = 0.27; P < 0.05) and PFFSH-1 and VS (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05). In conclusion, there is a median correlation between follicular population observed by ultrasonography and viable recovered structures after superovulation protocol. Therefore, this tool is not indicated as a screening tool, alone, in the selection of Santa Inês sheep embryo donors. [População folicular na estimação da resposta superovulatória em ovelhas da raça Santa Inês]. Resumo: Objetivou-se verificar a correlação entre a população folicular na resposta superovulatória e na recuperação de estruturas viáveis em programas de produção in vivo de embriões ovinos. Vinte e cinco ovelhas nulíparas da raça Santa Inês (11,9 ± 1,1 meses, ECC: 2,8 ± 0,3) foram superovuladas utilizando-se o cio base para início do protocolo (D0). Para sincronização prévia da emergência folicular, manteve-se por seis dias um implante vaginal contendo 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil), 24 horas antes da remoção do implante aplicou-se 300 UI de eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil) e 0,24mg de cloprostenol sódico (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brasil). Trinta e seis horas após a remoção da esponja, os animais receberam 25 ?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). A superovulação iniciou 80 horas após a retirada da esponja. Utilizou-se 200 mg de FSH/por animal (Folltropin®, União Química Farmacêutica Nacional S/A, São Paulo, Brasil) em seis doses decrescentes a cada 12 horas (50/50, 30/30, 20/20 mg). Na última dose de FSH, aplicou-se 0,24 mg de cloprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e, 24 horas após, 0,025 mg de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). Em paralelo, na primeira dose de FSH uma nova esponja (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil) foi inserida e removida na penúltima dose deste hormônio. Após a última dose de FSH realizou-se monta natural controlada a cada 12 horas. Utilizouse um aparelho de ultrassom (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) acoplado a um transdutor linear de 7,5MHz, por via transretal, para a quantificação da população folicular (PF) em dois momentos: no início do protocolo de sincronização do estro base (PFESTROBASE) e no momento da aplicação da primeira dose de FSH (PFFSH-1). As coletas foram realizadas por via cirúrgica, seis a sete dias após as coberturas, e as estruturas viáveis (EV) quantificadas. O número de CLs (NCLs) foi determinado por laparoscopia no dia da recuperação embrionária. As variáveis PFESTROBASE e PFFSH-1 foram comparadas com o NCLs e EV por meio do Índice de Correlação de Person e pela Análise de Regressão Linear Simples. Para todos os testes, considerou-se 5% de significância. Foram obtidos 7,5 ± 4,8 corpos lúteos e 4,0 ± 3,5 estruturas viáveis por doadora. Foram encontradas correlações significativas, medianas e baixas, entre o PFESTROBASE e NCLs (r=0,45; r2=0,17; p<0,05); PFFSH-1 e NCLs (r=0,41; r2=0,13; p<0,05); PFESTROBASE e EV (r=0,55; r2=0,27; p<0,05) e também entre o PFFSH-1 e EV (r=0,41; r2=0,13; p<0,05). Em conclusão, existe uma correlação mediana entre população folicular observada por ultrassonografia e estruturas viáveis recuperadas após protocolo de superovulação. Assim, esta metodologia não é indicada como ferramenta de triagem isolada na seleção de ovelhas doadoras de embriões da raça Santa Inês. MenosAbstract: The aim was to verify the correlation between follicular population count, superovulatory response and the recovery of viable structures in the in vivo production of sheep embryos. Twenty-five nulliparous Santa Inês ewes (11.9 ± 1.1 months old, body score of 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG(Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brazil) were given. Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered.The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg). At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brazil) were administered. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. An ultrasound equipment (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) coupled to a 7,5 MHz linear transducer, by transrectal via was used for the quantification of the follicular population (P... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
FSH; Raça Santa Inês. |
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Thesagro: |
Ovelha; Ovino; Reprodução animal; Superovulação. |
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Thesaurus NAL: |
Ewes; Sheep; Superovulation. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/147091/1/cnpc-2016-Follicular-population.pdf
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Marc: |
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520 $aAbstract: The aim was to verify the correlation between follicular population count, superovulatory response and the recovery of viable structures in the in vivo production of sheep embryos. Twenty-five nulliparous Santa Inês ewes (11.9 ± 1.1 months old, body score of 2.8 ± 0.3) were superovulated using the Day 0 protocol concept. For previous wave synchonization, intravaginal progestagen sponges (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) were kept for 6 days and on Day 5, 300 IU eCG(Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brazil) and 0.24mg cloprostenol (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brazil) were given. Thirty-six hours after sponge removal, 25 µg licerelin was administered.The superovulation started 80 hours after sponge removal by the use of 200 mg of FSH/ per ewe (Folltropin-V ®, Bioniche Animal Health, Ontario, Canada) in six declining doses, every 12 hours (50/50, 30/30, 20/20 mg). At the first FSH dose, a new sponge (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brazil) was inserted and removed at the time of the fifth dose. At the last FSH dose, 0.24 mg of cloprostenol (Estron®, Agener Union, São Paulo, Brazil) and, 24 hours later, 25 µg of lecirelin (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brazil) were administered. Ewes were mated every twelve hours from the last FSH dose to the end of estrus. An ultrasound equipment (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) coupled to a 7,5 MHz linear transducer, by transrectal via was used for the quantification of the follicular population (PF) in two moments: at the beginning of the estrus synchronization (PFESTRUSBASE) and at the time of the first FSH dose (PFFSH-1). Embryo collections were carried out by surgical method, six to seven days after mating, and the viable structures (VS) quantified. The number of CLs (NCLs) was determined by laparoscopy previously to the embryo recovery. The PFESTRUSBASE and PFFSH-1 variables were compared with the NCLs and EV through the Pearson's correlation coefficient and Simple Linear Regression Analysis. For all tests, P < 0.05 was considered as statistically significant. An average of 7.5 ± 4.8 CLs and 4.0 ± 3.5 viable structures were obtained per donor. Significant correlations, medians and low, were found between: PFESTRUSBASE and NCLs (r = 0.45; r2 = 0.17; P < 0.05); PFFSH-1 and NCLs (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05); PFESTRUSBASE and VS (r = 0.55; r2 = 0.27; P < 0.05) and PFFSH-1 and VS (r = 0.41; r2 = 0.13; P < 0.05). In conclusion, there is a median correlation between follicular population observed by ultrasonography and viable recovered structures after superovulation protocol. Therefore, this tool is not indicated as a screening tool, alone, in the selection of Santa Inês sheep embryo donors. [População folicular na estimação da resposta superovulatória em ovelhas da raça Santa Inês]. Resumo: Objetivou-se verificar a correlação entre a população folicular na resposta superovulatória e na recuperação de estruturas viáveis em programas de produção in vivo de embriões ovinos. Vinte e cinco ovelhas nulíparas da raça Santa Inês (11,9 ± 1,1 meses, ECC: 2,8 ± 0,3) foram superovuladas utilizando-se o cio base para início do protocolo (D0). Para sincronização prévia da emergência folicular, manteve-se por seis dias um implante vaginal contendo 60 mg de acetato de medroxiprogesterona (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil), 24 horas antes da remoção do implante aplicou-se 300 UI de eCG (Novormon®, Schering Plough, São Paulo, Brasil) e 0,24mg de cloprostenol sódico (Estron®, Tecnopec, São Paulo, Brasil). Trinta e seis horas após a remoção da esponja, os animais receberam 25 ?g de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). A superovulação iniciou 80 horas após a retirada da esponja. Utilizou-se 200 mg de FSH/por animal (Folltropin®, União Química Farmacêutica Nacional S/A, São Paulo, Brasil) em seis doses decrescentes a cada 12 horas (50/50, 30/30, 20/20 mg). Na última dose de FSH, aplicou-se 0,24 mg de cloprostenol (Estron®, Agener União, São Paulo, Brasil) e, 24 horas após, 0,025 mg de lecirelina (Gestran Plus®, Tecnopec, São Paulo-SP, Brasil). Em paralelo, na primeira dose de FSH uma nova esponja (Progespon®, Zoetis, Campinas-SP, Brasil) foi inserida e removida na penúltima dose deste hormônio. Após a última dose de FSH realizou-se monta natural controlada a cada 12 horas. Utilizouse um aparelho de ultrassom (Sonoscape S6®, SonoScape, Shenzhen, China) acoplado a um transdutor linear de 7,5MHz, por via transretal, para a quantificação da população folicular (PF) em dois momentos: no início do protocolo de sincronização do estro base (PFESTROBASE) e no momento da aplicação da primeira dose de FSH (PFFSH-1). As coletas foram realizadas por via cirúrgica, seis a sete dias após as coberturas, e as estruturas viáveis (EV) quantificadas. O número de CLs (NCLs) foi determinado por laparoscopia no dia da recuperação embrionária. As variáveis PFESTROBASE e PFFSH-1 foram comparadas com o NCLs e EV por meio do Índice de Correlação de Person e pela Análise de Regressão Linear Simples. Para todos os testes, considerou-se 5% de significância. Foram obtidos 7,5 ± 4,8 corpos lúteos e 4,0 ± 3,5 estruturas viáveis por doadora. Foram encontradas correlações significativas, medianas e baixas, entre o PFESTROBASE e NCLs (r=0,45; r2=0,17; p<0,05); PFFSH-1 e NCLs (r=0,41; r2=0,13; p<0,05); PFESTROBASE e EV (r=0,55; r2=0,27; p<0,05) e também entre o PFFSH-1 e EV (r=0,41; r2=0,13; p<0,05). Em conclusão, existe uma correlação mediana entre população folicular observada por ultrassonografia e estruturas viáveis recuperadas após protocolo de superovulação. Assim, esta metodologia não é indicada como ferramenta de triagem isolada na seleção de ovelhas doadoras de embriões da raça Santa Inês.
650 $aEwes
650 $aSheep
650 $aSuperovulation
650 $aOvelha
650 $aOvino
650 $aReprodução animal
650 $aSuperovulação
653 $aFSH
653 $aRaça Santa Inês
700 1 $aPINTO, P. H. N.
700 1 $aBRAGANÇA, G. M.
700 1 $aSANTOS, G. B.
700 1 $aRIBEIRO, L. S.
700 1 $aBATISTA, R. I. T. P.
700 1 $aCOSENTINO, I. O.
700 1 $aFABJAN, J. M. G. S.
700 1 $aFONSECA, J. F. da
700 1 $aBRANDAO, F. Z.
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