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Registro Completo |
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Biblioteca(s): |
Embrapa Trigo. |
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Data corrente: |
30/11/1994 |
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Data da última atualização: |
30/11/1994 |
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Autoria: |
BERTAGNOLLI, P. F.; BONATO, E. R.; SCHNEIDER, S. |
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Título: |
Avaliação de genótipos de soja. III. Ensaios finais. (b) |
|
Ano de publicação: |
1994 |
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Fonte/Imprenta: |
In: REUNIÃO DE PESQUISA DE SOJA DA REGIÃO SUL, 22., 1994, Cruz Alta. Ata e resumos... Cruz Alta: FUNDACEP FECOTRIGO, 1994. |
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Páginas: |
p. 136 |
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Idioma: |
Português |
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Notas: |
Trabalho apresentado na XXII Reunião de Pesquisa de Soja da Região Sul, Cruz Alta, 1994. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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Marc: |
LEADER 00586naa a2200157 a 4500
001 1822023
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500 $aTrabalho apresentado na XXII Reunião de Pesquisa de Soja da Região Sul, Cruz Alta, 1994.
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773 $tIn: REUNIÃO DE PESQUISA DE SOJA DA REGIÃO SUL, 22., 1994, Cruz Alta. Ata e resumos... Cruz Alta: FUNDACEP FECOTRIGO, 1994.
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Registro original: |
Embrapa Trigo (CNPT) |
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Biblioteca |
ID |
Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
URL |
Voltar
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 | Acesso ao texto completo restrito à biblioteca da Embrapa Agroindústria Tropical. Para informações adicionais entre em contato com cnpat.biblioteca@embrapa.br. |
Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Agroindústria Tropical. |
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Data corrente: |
04/01/2011 |
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Data da última atualização: |
04/01/2011 |
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Tipo da produção científica: |
Orientação de Tese de Pós-Graduação |
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Autoria: |
PINHEIRO, M. V. M. |
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Afiliação: |
Marcos Vinícius Marques Pinheiro, UFC. |
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Título: |
Propagação in vitro de antúrio (Anthurium andraeanum cv. Eidibel) via embriogênese somática. |
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Ano de publicação: |
2010 |
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Fonte/Imprenta: |
67 f. |
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Idioma: |
Português |
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Notas: |
Dissertação (Mestrado em Fisiologia Vegetal, UFV). 23/02/2010. Co-orientadora: Ana Cristina Portugal Pinto de Carvalho, CNPAT. |
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Conteúdo: |
O presente trabalho teve como objetivo estabelecer a propagação in vitro de
Anthurium andraeanum cv. Eidibel via embriogênese somática, avaliando a indução das
culturas embriogênicas (Experimento I); pré-maturação dos embriões somáticos
(Experimento 11); e maturação dos embriões somáticos e posterior regeneração das
plantas (Experimento III). No experimento I, adotou-se a subdivisão de plantas de
antúrio estabelecidas in vitro, para a obtenção das fontes de explante. Utilizou-se o
delineamento inteiramente casualizado (DIC), em disposição fatorial 53, representados
por cinco tipos de explantes (folhas inteiras e seccionadas ao meio; pedolos; segmentos
nodais com uma gema; e segmento de raiz sem o ápice radicular; cada explante com -
1,0 cm); cinco àuxinas (AIA, ANA, AIB, 2,4-D e Picloram) em cinco concentrações
(0,0; 2,5; 5,0; 7,5 e 10 J.lM) e cinco testemunhas adicionais, ou seja, cada fonte de
explante adicionada ao tratamento sem auxina. A repetição foi composta por cinco
placas de Petri (90 x 15 mm), contendo 25 mL de meio Pierik, e cada unidade
experimentalnove explantes/placa,mantidas em sala de crescimento, a 25 ::!:2°C, no
escuro. Após 60 dias de cultivo, avaliou-se a presença de calos embriogênicos, brotos,
raÍzes e massa freca dos calos produzidos. A produção dos primeiros calos foi
observada em explantes de pedolo e segmento nodal, e a sua produção ocorreu,
principalmente, nos meios acrescidos de ANA e Picloram, nas concentrações de 7,5 e
10,0 J.lM, respectivamente. Em 10,0 J.lM, não houve diferença estatística entre os
tratamentos com as auxinas ANA, 2,4-D e Picloram, sendo superiores aos demais. Para
a produção de brotos, o explante com a maior média foi o segmento nodal, em meio
sem a adição de auxina. Observaram-se a proliferação de raÍzes em explantes de
segmento nodal e radicular, principalmente em meio suplementado com AIB. A partir
de análise histoquímica, determinaram-se, por meio da dupla coloração com carmim
acético e azul de Evans e teste de lugol, características embriogênicas dos calos. No
entanto, observou-se em cortes histológicos que os calos produzidos em meio Pierik
acrescido de 10,0 J.lM de ANA apresentaram embriões bem desenvolvidos, com presença de procâmbio e protoderme, demostrando sinais de polarização. Para a
proliferação das culturas embriogênicas, foi adotada a subdivisão dos calos
selecionados, e inoculados em placas de Petri com meio de cultura Pierik acrescido de
10,0 J.lMde ANA, em cinco subcultivos sucessivos, com 60 dias cada. No experimento
II, foram inoculados os calos produzidos na fase de proliferação, com cerca de 90 mg,
em Erlenmeyers de 125 mL, contendo 25 mL de meio de cultura líquido, Pierik e AA2,
com diferentes concentrações de 2,4-D (0,00; 4,52; 9,05 J.lM) e cinetina, (0,00; 0,47;
2,32 J.lM),analisados em DIC com fatorial2 x 3 x 3, mantidos em sala de crescimento a
25 :f:2 DC,no escuro, permanecendo sob agitação orbital de 100 rpm. Avaliadas aos 45
dias de cultivo, quanto a: massa dos calos embriogênicos; produção de embriões
somáticos; produção de embriogênese somática secundária; porcentagem de oxidação;
coloração, textura dos calos embriogênicos e desenvolvimento dos embriões somáticos
produzidos. A produção de embriões somáticos foi superior no meio Pierik acrescido de
0,47 J.lM de cinetina, observando-se a menor produção de embriogênese somática
secundaria, menor porcentagem de oxidação, com textura friável dos calos, sendo um
dos tratamentos com maior desenvolvimento dos embriões, comprovado pelos cortes
histológicos, no qual observaram embriões no estádio globular, com sinais de
polarização, até embriões maturados, com a presença de folha primária e zona
meristemática. No Experimento III, os calos produzidos na fase de pré-maturação foram
inoculados:em Erlenmeyers contendo 25 mL de meio líquido e semi-sólido, Pierik e
AA2, suplementados com as concentrações de cinetina (0,0; 1,16; 2,32; 4,64 J.lM),
formando um DIC com fatorial2 x 2 x 4, mantidos em sala de crescimento, a 25 :f:2 DC,
sob fotoperíodo de 16 horas, irradiância luminosa de 36 J.lmolm-2S-l.Os meios líquidos
permaneceram sob agitação orbital de 100 rpm. Avaliou-se aos 45 dias de cultivo
quanto ao número de calos com embriões maturados; porcentagem de conversão em
plantas; porcentagem de oxidação; e número de embriões com maturação completa.
Recomenda-se o meio Pierik suplementado com 2,32 J.lM de cinetina, no qual, foi
superior para o número de calos embriogênicos com embriões maturados, número de
embriões com maturação completa e principalmente pela melhor conversão em plantas.
As plantas produzidas foram aclimatizadas ex vitro na bancada do laboratório e
transferi das, no final de dois meses, para casa de vegetação. O presente estudo
evidenciou que a indução e proliferação de calos embriogênicos a partir de segmentos
nodais de antúrio foi dependente do tipo e da concentração das auxinas. Para as fases de
pré-maturação e maturação dos embriões somáticos, é necessária a retirada ou a redução
da auxina no meio de cultura, adicionando concentrações ideais de citocinina para cada
fase, e assim, obtendo máxima conversão dos embriões somáticos em plantas, no final
do processo. MenosO presente trabalho teve como objetivo estabelecer a propagação in vitro de
Anthurium andraeanum cv. Eidibel via embriogênese somática, avaliando a indução das
culturas embriogênicas (Experimento I); pré-maturação dos embriões somáticos
(Experimento 11); e maturação dos embriões somáticos e posterior regeneração das
plantas (Experimento III). No experimento I, adotou-se a subdivisão de plantas de
antúrio estabelecidas in vitro, para a obtenção das fontes de explante. Utilizou-se o
delineamento inteiramente casualizado (DIC), em disposição fatorial 53, representados
por cinco tipos de explantes (folhas inteiras e seccionadas ao meio; pedolos; segmentos
nodais com uma gema; e segmento de raiz sem o ápice radicular; cada explante com -
1,0 cm); cinco àuxinas (AIA, ANA, AIB, 2,4-D e Picloram) em cinco concentrações
(0,0; 2,5; 5,0; 7,5 e 10 J.lM) e cinco testemunhas adicionais, ou seja, cada fonte de
explante adicionada ao tratamento sem auxina. A repetição foi composta por cinco
placas de Petri (90 x 15 mm), contendo 25 mL de meio Pierik, e cada unidade
experimentalnove explantes/placa,mantidas em sala de crescimento, a 25 ::!:2°C, no
escuro. Após 60 dias de cultivo, avaliou-se a presença de calos embriogênicos, brotos,
raÍzes e massa freca dos calos produzidos. A produção dos primeiros calos foi
observada em explantes de pedolo e segmento nodal, e a sua produção ocorreu,
principalmente, nos meios acrescidos de ANA e Picloram, nas concentrações de 7,5 e
10,0 J.lM, respectivament... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Antúrio - cultura e meios de cultura; Antúrio - propagação in vitro; Antúrio - reguladores; Embriogênese somática; Plantas ornamentais. |
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Thesagro: |
Anthurium Andraeanum; Propagação Vegetativa. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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Marc: |
LEADER 06119nam a2200205 a 4500
001 1871557
005 2011-01-04
008 2010 bl uuuu m 00u1 u #d
100 1 $aPINHEIRO, M. V. M.
245 $aPropagação in vitro de antúrio (Anthurium andraeanum cv. Eidibel) via embriogênese somática.
260 $a67 f.$c2010
500 $aDissertação (Mestrado em Fisiologia Vegetal, UFV). 23/02/2010. Co-orientadora: Ana Cristina Portugal Pinto de Carvalho, CNPAT.
520 $aO presente trabalho teve como objetivo estabelecer a propagação in vitro de Anthurium andraeanum cv. Eidibel via embriogênese somática, avaliando a indução das culturas embriogênicas (Experimento I); pré-maturação dos embriões somáticos (Experimento 11); e maturação dos embriões somáticos e posterior regeneração das plantas (Experimento III). No experimento I, adotou-se a subdivisão de plantas de antúrio estabelecidas in vitro, para a obtenção das fontes de explante. Utilizou-se o delineamento inteiramente casualizado (DIC), em disposição fatorial 53, representados por cinco tipos de explantes (folhas inteiras e seccionadas ao meio; pedolos; segmentos nodais com uma gema; e segmento de raiz sem o ápice radicular; cada explante com - 1,0 cm); cinco àuxinas (AIA, ANA, AIB, 2,4-D e Picloram) em cinco concentrações (0,0; 2,5; 5,0; 7,5 e 10 J.lM) e cinco testemunhas adicionais, ou seja, cada fonte de explante adicionada ao tratamento sem auxina. A repetição foi composta por cinco placas de Petri (90 x 15 mm), contendo 25 mL de meio Pierik, e cada unidade experimentalnove explantes/placa,mantidas em sala de crescimento, a 25 ::!:2°C, no escuro. Após 60 dias de cultivo, avaliou-se a presença de calos embriogênicos, brotos, raÍzes e massa freca dos calos produzidos. A produção dos primeiros calos foi observada em explantes de pedolo e segmento nodal, e a sua produção ocorreu, principalmente, nos meios acrescidos de ANA e Picloram, nas concentrações de 7,5 e 10,0 J.lM, respectivamente. Em 10,0 J.lM, não houve diferença estatística entre os tratamentos com as auxinas ANA, 2,4-D e Picloram, sendo superiores aos demais. Para a produção de brotos, o explante com a maior média foi o segmento nodal, em meio sem a adição de auxina. Observaram-se a proliferação de raÍzes em explantes de segmento nodal e radicular, principalmente em meio suplementado com AIB. A partir de análise histoquímica, determinaram-se, por meio da dupla coloração com carmim acético e azul de Evans e teste de lugol, características embriogênicas dos calos. No entanto, observou-se em cortes histológicos que os calos produzidos em meio Pierik acrescido de 10,0 J.lM de ANA apresentaram embriões bem desenvolvidos, com presença de procâmbio e protoderme, demostrando sinais de polarização. Para a proliferação das culturas embriogênicas, foi adotada a subdivisão dos calos selecionados, e inoculados em placas de Petri com meio de cultura Pierik acrescido de 10,0 J.lMde ANA, em cinco subcultivos sucessivos, com 60 dias cada. No experimento II, foram inoculados os calos produzidos na fase de proliferação, com cerca de 90 mg, em Erlenmeyers de 125 mL, contendo 25 mL de meio de cultura líquido, Pierik e AA2, com diferentes concentrações de 2,4-D (0,00; 4,52; 9,05 J.lM) e cinetina, (0,00; 0,47; 2,32 J.lM),analisados em DIC com fatorial2 x 3 x 3, mantidos em sala de crescimento a 25 :f:2 DC,no escuro, permanecendo sob agitação orbital de 100 rpm. Avaliadas aos 45 dias de cultivo, quanto a: massa dos calos embriogênicos; produção de embriões somáticos; produção de embriogênese somática secundária; porcentagem de oxidação; coloração, textura dos calos embriogênicos e desenvolvimento dos embriões somáticos produzidos. A produção de embriões somáticos foi superior no meio Pierik acrescido de 0,47 J.lM de cinetina, observando-se a menor produção de embriogênese somática secundaria, menor porcentagem de oxidação, com textura friável dos calos, sendo um dos tratamentos com maior desenvolvimento dos embriões, comprovado pelos cortes histológicos, no qual observaram embriões no estádio globular, com sinais de polarização, até embriões maturados, com a presença de folha primária e zona meristemática. No Experimento III, os calos produzidos na fase de pré-maturação foram inoculados:em Erlenmeyers contendo 25 mL de meio líquido e semi-sólido, Pierik e AA2, suplementados com as concentrações de cinetina (0,0; 1,16; 2,32; 4,64 J.lM), formando um DIC com fatorial2 x 2 x 4, mantidos em sala de crescimento, a 25 :f:2 DC, sob fotoperíodo de 16 horas, irradiância luminosa de 36 J.lmolm-2S-l.Os meios líquidos permaneceram sob agitação orbital de 100 rpm. Avaliou-se aos 45 dias de cultivo quanto ao número de calos com embriões maturados; porcentagem de conversão em plantas; porcentagem de oxidação; e número de embriões com maturação completa. Recomenda-se o meio Pierik suplementado com 2,32 J.lM de cinetina, no qual, foi superior para o número de calos embriogênicos com embriões maturados, número de embriões com maturação completa e principalmente pela melhor conversão em plantas. As plantas produzidas foram aclimatizadas ex vitro na bancada do laboratório e transferi das, no final de dois meses, para casa de vegetação. O presente estudo evidenciou que a indução e proliferação de calos embriogênicos a partir de segmentos nodais de antúrio foi dependente do tipo e da concentração das auxinas. Para as fases de pré-maturação e maturação dos embriões somáticos, é necessária a retirada ou a redução da auxina no meio de cultura, adicionando concentrações ideais de citocinina para cada fase, e assim, obtendo máxima conversão dos embriões somáticos em plantas, no final do processo.
650 $aAnthurium Andraeanum
650 $aPropagação Vegetativa
653 $aAntúrio - cultura e meios de cultura
653 $aAntúrio - propagação in vitro
653 $aAntúrio - reguladores
653 $aEmbriogênese somática
653 $aPlantas ornamentais
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Esconder MarcMostrar Marc Completo |
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Registro original: |
Embrapa Agroindústria Tropical (CNPAT) |
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