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Registro Completo |
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Biblioteca(s): |
Embrapa Florestas. |
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Data corrente: |
03/07/2015 |
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Data da última atualização: |
15/07/2015 |
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Autoria: |
WITTMANN, F.; SCHONGART, J.; BRITO, J. M. De; WITTMANN, A. de O.; PIEDADE, M. T. F.; PAROLIN, P.; JUNK, W. J.; GUILLAUMET, J.-L. |
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Título: |
Manual de árvores de várzea da Amazônia Central: taxonomia, ecologia e uso. |
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Ano de publicação: |
2010 |
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Fonte/Imprenta: |
Manaus: INPA, 2010. |
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Páginas: |
298 p. |
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Descrição Física: |
il. color. |
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ISBN: |
978-85-211-0067-6 |
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Idioma: |
Português |
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Notas: |
Ed. bilíngue. Título em inglês: Manual of trees from Central Amazonian varzea floodplains. |
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Conteúdo: |
Introdução; Florestas de várzea Amazônicas; O ambiente; Inundação, dinâmica geomorfológica e estabilidade dos habitats; Sucessão florestal e os tipos de florestas de várzea; Estrutura da floresta; Composição de espécies e gradientes de diversidade; Uso das árvores de várzea; Produtos florestais não madeireiros; Produção de madeira; Possibilidades de produção madeireira sustentável; Astrocaryum jauari; Astrocaryum murumuru; Attalea phalerata; Bactris brongniartii; Bactris concinna; Bactris riparia; Euterpe precatoria; Mauritia flexuosa; Annona hypoglauca; Annona tenuipes; Duguetia quitarensis; Duguetia spixiana; Guatteria inundata; Oxandra riedeliana; Unonopsis floribunda; Unonopsis guatterioides; Xylopia calophylla; Virola calophylla; Virola mollissima; Virola surinamensis; Aniba affinis; Anniba hostmanniana; Aniba megaphylla; Aniba riparia; Endlicheria anomala; Endlicheria formosa; Licaria armeniaca; Nectandra amazonum; Nectandra hihua; Ocotea aciphylla; Ocotea cymbarum; Symmeria paniculata; Triplaris dugandii; Triplaris surinamensis; Neea aeruginosa; Neea spruceana; Batocarpus amazonicus; Ficus anthelmintica; Ficus amazonica; Ficus casapiensis; Ficus guianensis; Ficus mathewsii; Helicostylis scabra; Maclura tinctoria; Maquira calophylla; Maquira coriacea; Sorocea duckei; Cecropia latiloba; Cecropia membranacea; Coussapoa nitida; Pourouma guianensis; Acosmium nitens; Campsiandra comosa; Cassia leiandra; Copaifera officinalis; Crudia amazonica; Cynometra bauhiniifolia; Macrolobium acaciifolium; Macrolobium bifolium; Schizolobium amazonicum; Senna bacillaris; Senna reticulata; Tachigali venusta; Acacia loretensis; Albizia subdimidiata; Hydrochorea corymbosa; Inga cinnamonea; Inga disticha; Inga obidensis; Inga pilosula; Inga punctata; Inga splendens; Pseudopiptadenia suaveolens; Stryphnodendron guianense; Zygia cataractae; Zygia latifolia; Clitoria amazonum; Erythrina fusca; Etaballia dubia; Lecointea amazonica; Ormosia macrocalyx; Paramachaerium ormosioides; Platymiscium ulei; Pterocarpus amazonum; Taralea oppositifolia; Vatairea guianensis; Caryocar microcarpum; Couepia chrysocalyx; Couepia paraensis; Licania apetala; Licania brittoniana; Licania heteromorpha; Licania longistyla; Parinari excelsa; Tapura juruana; Calophyllum brasiliense; Caraipa punctulata; Clusia panapanari; Garcinia brasiliensis; Garcinia madruno; Tovomita umbellata; Vismia baccifera; Vismia macrophylla; Erythroxylon kapplerianum; Erythroxylon tucuriense; Alchornea castaneifolia; Alchornea discolor; Discocarpus brasiliensis; Hevea brasiliensis; Hevea pauciflora; Hevea spruceana; Hura crepitans; Mabea nitida; Piranhea trifoliata; Sapium glandulosum; Banara guianensis; Banara nitida; Casearia aculeata; Homalium guianense; Laetia corymbulosa; Xylosma benthamii; Salix martiana; Byrsonima japurensis; Glandonia macrocarpa; Quiina rhytidopis; Heisteria acuminata; Minquartia guianensis; Leonia glycycarpa; Sloanea floribunda; Sloanea terniflora; Buchenavia oxycarpa; Terminalia dichotoma; Mouriri acustiflora; Mouriri grandiflora; Calypthrantes multiflora; Eugenia inundata; Eugenia ochrophloea; Myrciaria dubia; Psidium acutangulum; Vochsia guianensis; Crataeva benthamii; Apeiba glabra; Luehea cymulosa; Guazuma ulmifolia; Herrania mariae; Sterculia apetala; Theobroma cacau; Ceiba pentandra; Pachira insignis; Pseudobombax munguba; Spondias lutea; Protium strumosum; Cedrela adorata; Guarea guidonia; Trichilia lecointei; Zanthoxylum compactum; Talisia cupularis; Simaba multiflora; Couroupita subsessilis; Eschweilera albiflora; Eschweilera ovalifolia; Eschweilera parvifolia; Gustavia augusta; Gustavia poeppigiana; Lecythis pisonis; Cybianthus spicatus; Chrysophyllum argenteum; Micropholis egensis; Pouteria elegans; Pouteria glomerata; Pouteria procera; Clavija lancifolia; Aspidosperma rigidum; Himatanthus sucuuba; Malouetia tamaquarina; Tabernaemontana markgrafiana; Tabernaemontana siphilitica; Alibertia edulis; Bothriospora corymbosa; Calycophyllum spruceanum; Duroia duckei; Genipa americana; Cordia nodosa; Crescentia amazonica; Crescentia cujete; Tabebuia barbata; Tabebuia serratifolia; Vitex cymosa; Ilex inundata; Tessaria integrifolia. MenosIntrodução; Florestas de várzea Amazônicas; O ambiente; Inundação, dinâmica geomorfológica e estabilidade dos habitats; Sucessão florestal e os tipos de florestas de várzea; Estrutura da floresta; Composição de espécies e gradientes de diversidade; Uso das árvores de várzea; Produtos florestais não madeireiros; Produção de madeira; Possibilidades de produção madeireira sustentável; Astrocaryum jauari; Astrocaryum murumuru; Attalea phalerata; Bactris brongniartii; Bactris concinna; Bactris riparia; Euterpe precatoria; Mauritia flexuosa; Annona hypoglauca; Annona tenuipes; Duguetia quitarensis; Duguetia spixiana; Guatteria inundata; Oxandra riedeliana; Unonopsis floribunda; Unonopsis guatterioides; Xylopia calophylla; Virola calophylla; Virola mollissima; Virola surinamensis; Aniba affinis; Anniba hostmanniana; Aniba megaphylla; Aniba riparia; Endlicheria anomala; Endlicheria formosa; Licaria armeniaca; Nectandra amazonum; Nectandra hihua; Ocotea aciphylla; Ocotea cymbarum; Symmeria paniculata; Triplaris dugandii; Triplaris surinamensis; Neea aeruginosa; Neea spruceana; Batocarpus amazonicus; Ficus anthelmintica; Ficus amazonica; Ficus casapiensis; Ficus guianensis; Ficus mathewsii; Helicostylis scabra; Maclura tinctoria; Maquira calophylla; Maquira coriacea; Sorocea duckei; Cecropia latiloba; Cecropia membranacea; Coussapoa nitida; Pourouma guianensis; Acosmium nitens; Campsiandra comosa; Cassia leiandra; Copaifera officinalis; Crudia amazonica; Cynometra bauhiniifolia; Macro... 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Palavras-Chave: |
Brasil; Espécie arbórea; Uso. |
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Taxonomia. |
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Registro original: |
Embrapa Florestas (CNPF) |
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Biblioteca |
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Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
URL |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Milho e Sorgo. |
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Data corrente: |
10/09/2012 |
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Data da última atualização: |
28/09/2017 |
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Tipo da produção científica: |
Artigo em Periódico Indexado |
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Circulação/Nível: |
B - 1 |
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Autoria: |
COSTA, M. A.; TAVARES, W. S.; PEREIRA, A. I. A.; CRUZ, I.; SERRÃO, J. E.; ZANUNCIO, J. C. |
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Afiliação: |
IVAN CRUZ, CNPMS; UFV; UFV. |
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Título: |
Chrysoperla externa (Neuroptera: Chrysopidae) and Utetheisa ornatrix (Lepidoptera: arctiidae) on organically grown Crotalaria juncea (Fabaceae). |
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Ano de publicação: |
2012 |
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Fonte/Imprenta: |
Planta Daninha, Viçosa, MG, v. 30, n. 3, p. 459-468, 2012. |
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DOI: |
10.1590/S0100-83582012000300001 |
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Idioma: |
Inglês |
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Conteúdo: |
Chrysoperla externa (Neuroptera: Chrysopidae) larvae can avoid foraging on plants of Crotalaria juncea (Fabaceae) after the issuance of floral buds, when the prey of Utetheisa ornatrix (Lepidoptera: Arctiidae) incorporate toxic pyrrolizidine alkaloids from this plant. This reduces the predation and favors increasing the number of adults and eggs of this defoliator on crops of this plant. The aim of the present paper was to evaluate some biological and ecological aspects of C. externa and U. ornatrix on the organic crop of C. juncea in the EMBRAPA Maize and Sorghum in Sete Lagoas, Minas Gerais State, Brazil. Chrysoperla externa and U. ornatrix were more abundant in the vegetative and flowering stages of C. juncea, respectively, with caterpillars of this defoliator feeding on leaves and seeds of this plant. The duration of the stages/instars, survival, lifetime fecundity, and oviposition showed that the branches of C. juncea are a suitable food for U. ornatrix. The abundance of adults and larvae of C. externa was lower in the flowering and pods stages of C. juncea, respectively, when the postures of U. ornatrix are present, probably due to the toxicity of the eggs of this prey to this predator. During these stages, C. externa may be reared with alternative hosts, and when the crops of C. juncea are scarce, an artificial diet should be used for rearing this defoliator in the laboratory for biological research and the development of biological control tactics. |
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Palavras-Chave: |
Manejo integrado de praga. |
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Thesagro: |
Adubação Verde; Controle biológico; Larva. |
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Categoria do assunto: |
H Saúde e Patologia |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/65863/1/Crysoperla-externa.pdf
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Marc: |
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520 $aChrysoperla externa (Neuroptera: Chrysopidae) larvae can avoid foraging on plants of Crotalaria juncea (Fabaceae) after the issuance of floral buds, when the prey of Utetheisa ornatrix (Lepidoptera: Arctiidae) incorporate toxic pyrrolizidine alkaloids from this plant. This reduces the predation and favors increasing the number of adults and eggs of this defoliator on crops of this plant. The aim of the present paper was to evaluate some biological and ecological aspects of C. externa and U. ornatrix on the organic crop of C. juncea in the EMBRAPA Maize and Sorghum in Sete Lagoas, Minas Gerais State, Brazil. Chrysoperla externa and U. ornatrix were more abundant in the vegetative and flowering stages of C. juncea, respectively, with caterpillars of this defoliator feeding on leaves and seeds of this plant. The duration of the stages/instars, survival, lifetime fecundity, and oviposition showed that the branches of C. juncea are a suitable food for U. ornatrix. The abundance of adults and larvae of C. externa was lower in the flowering and pods stages of C. juncea, respectively, when the postures of U. ornatrix are present, probably due to the toxicity of the eggs of this prey to this predator. During these stages, C. externa may be reared with alternative hosts, and when the crops of C. juncea are scarce, an artificial diet should be used for rearing this defoliator in the laboratory for biological research and the development of biological control tactics.
650 $aAdubação Verde
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653 $aManejo integrado de praga
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