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| Registros recuperados : 121 | |
| 41. |  | CAMPOS, T. de; BENCHIMOL, L. L.; CARBONELL, S. A. M.; CHIORATTO, A. F.; FORMIGHIERI, E. F.; SOUZA, A. P. Microsatellites for genetic studies and breeding programs in common bean. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, DF, v. 42, n. 4, p. 589-592, abr. 2007 Notas Científicas.
Título em português: Microssatélites para estudos genéticos e programas de melhoramento em feijoeiro.| Biblioteca(s): Embrapa Unidades Centrais. |
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| 42. | | ALVES, J. F.; TEIXEIRA, R. B.; RAPOSO, A.; OLIVEIRA, M. C.; BARBOSA, E. M.; CAMPOS, T. de; GONCALVES, R. C. Molecular characterization of rubber tree clones (Hevea brasiliensis) using microsatellite markers. In: SIMPÓSIO BRASILEIRO DE GENÉTICA MOLECULAR DE PLANTAS, 3., 2011, Ilhéus. Resumos. [S. l.]: Sociedade Brasileira de Genética, 2011. 1 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 43. | | SOUSA, A. C. B. de; JANK, L.; CAMPOS, T. de; SFORÇA, D. A.; ZUCCHI, M. I.; SOUZA, A. P. de. Molecular diversity and genetic structure of guineagrass (Panicum maximum Jacq.), a tropical pasture grass. Tropical Plant Biology, v.4, n.3-4, p. 185-202, 2011.| Biblioteca(s): Embrapa Gado de Corte. |
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| 44. | | AZÊVEDO, H. S. F. da S.; AZEVEDO, J. M. A. de; SILVA, L. M. da; MARTINS, K.; CAMPOS, T. de. Uso da biologia molecular para estudos genéticos em açaizeiros na Amazônia brasileira. In: MENEGUETTI, D. U. de O.; CARVALHO, C. M.; ZAN, R. A.; SILVA, R. P. M. (org.). Ciência, inovação e tecnologia na Amazônia. Rio Branco, AC: Stricto Sensu, 2019. p. 120-135.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 45. | | REIS, M. V. M.; DAMASCENO JUNIOR, P. C.; CAMPOS, T. DE O.; DIEGUES, I. P.; FREITAS, S. C. de. Variabilidade genética e associação entre caracteres em germoplasma de pinhão-manso (Jatropha curcas L.). Revista Ciência Agronômica, v. 46, n. 2, p. 412-420, abr./jun., 2015.| Biblioteca(s): Embrapa Agroindústria de Alimentos. |
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| 46. | | OBLESSUC, P. R.; CAMPOS, T. de; CARDOSO, J. M. K.; SFORÇA, D. A.; BARONI, R. M.; SOUZA, A. P. de; BENCHIMOL, L. L. Adaptation of fluorescent technique for genotyping with new microsatellite markers in common bean. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, DF, v. 44, n. 6, p. 638-644, jun. 2009. Notas Científicas.
Título em português: Adaptação da técnica de fluorescência para fins de genotipagem com novos marcadores microssatélite em feijoeiro.| Biblioteca(s): Embrapa Agricultura Digital; Embrapa Unidades Centrais. |
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| 48. | | CAMPOS, T. de; TEIXEIRA, R. B.; AZEVÊDO, H. S. F. da S.; OLIVEIRA, J. C.; SOUSA, A. C. B. de; FLORES, P. S. Certificação genética de genótipos de mandioca para indicação geográfica. In: CONGRESSO REGIONAL DE PESQUISA DO ESTADO DO ACRE; SEMINÁRIO DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA UFAC, 24., 2015, Rio Branco. Anais... Rio Branco: CNPq: Ufac: Embrapa: FAPAC: Ieval, 2015. 1 p.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 50. | | OLIVEIRA, J. C. de; SILVA, A. L. D. da; SILVA, C. C. da; SOUZA, A. P. de; FORMIGHIERI, E. F.; CAMPOS, T. de. Caracterização de bibliotecas de RNA-Seq de amendoim forrageiro para o desenvolvimento de novos microssatélites. In: SEMINÁRIO DA EMBRAPA ACRE DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA E PÓS-GRADUAÇÃO, 2., 2019, Rio Branco, AC. A Contribuição da ciência para a agropecuária no Acre: anais. Rio Branco, AC: Embrapa Acre, 2020. p. 83-88. Banner. (Embrapa Acre. Eventos técnicos & científicos, 2). Editores técnicos: Virgínia de Souza Álvares; Fabiano Marçal Estanislau.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 52. | | OLIVEIRA, J. C. de; SILVA, L. M. da; FORMIGHIERI, E. F.; SILVA, C. C. da; SOUZA, A. P. de; CAMPOS, T. de. Caracterização de novos microssatélites desenvolvidos a partir do transcriptoma de amendoim forrageiro. In: SEMINÁRIO DA EMBRAPA ACRE DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA E PÓS-GRADUAÇÃO, 4., 2021, Rio Branco, AC. Atividades agropecuária e florestal para o desenvolvimento sustentável da Amazônia: anais. Rio Branco, AC: Embrapa Acre, 2022. Pôster. p. 161-166. (Embrapa Acre. Eventos técnicos & científicos, 4). Editores técnicos: Rodrigo Souza Santos; Fabiano Marçal Estanislau.| Biblioteca(s): Embrapa Agroenergia; Embrapa Tabuleiros Costeiros. |
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| 53. | | OLIVEIRA, J. C. de; SILVA, L. M. da; FORMIGHIERI, E. F.; SILVA, C. C. da; SOUZA, A. P. de; CAMPOS, T. de. Caracterização de novos microssatélites desenvolvidos a partir do transcriptoma de amendoim forrageiro. In: SEMINÁRIO DA EMBRAPA ACRE DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA E PÓS-GRADUAÇÃO, 4., 2021, Rio Branco, AC. Atividades agropecuária e florestal para o desenvolvimento sustentável da Amazônia: anais. Rio Branco, AC: Embrapa Acre, 2022. Pôster. p. 161-166. (Embrapa Acre. Eventos técnicos & científicos, 4). Editores técnicos: Rodrigo Souza Santos; Fabiano Marçal Estanislau.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 54. | | SOUSA, A. C. B.; GODOY, R.; SFORÇA, D. A.; CAMPOS, T. de; ZUCCHI, M. I.; JANK, L.; SOUZA, A. P. de. Genetic diversity analysis among pigeonpea genotypes adapted to South American regions based on microsatellite markers. Scientia Agricola, Piracicaba, v. 68, n. 4, p. 431-439, July/Aug. 2011.| Biblioteca(s): Embrapa Acre; Embrapa Gado de Corte. |
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| 55. | | OLIVEIRA, R. S.; SILVA, V. de S. e; LIMA, L. M. S.; TEIXEIRA, R. B.; MARTINS, K.; RAPOSO, A.; CAMPOS, T. de; WADT, L. H. de O. Genetic diversity of Brazil nut (Bertholletia excelsa Bonpl.) using molecular markers. In: SIMPÓSIO BRASILEIRO DE GENÉTICA MOLECULAR DE PLANTAS, 3, 2011, Ilhéus. Resumos. [S. l.]: Sociedade Brasileira de Genética, 2011. 1 p. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 56. | | CADDAH, M. K.; CAMPOS, T. de; ZUCCHI, M. I.; SOUZA, A. P. de; BITTRICH, V.; AMARAL, M. do C. E. do. Species boundaries inferred from microsatellite markers in the Kielmeyera coriacea complex (Calophyllaceae) and evidence of asymmetric hybridization. Plant Systematics and Evolution, Heidelberg, v. 299, n. 4, p. 731-741, Apr. 2013.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 57. | | SILVA, L. F. da; AZÊVEDO, H. S. F. da S.; CAMPOS, T. de; VALENTIM, J. F.; ASSIS, G. M. L. de; SILVA, L. M. da. Superação da dormência de sementes de amendoim forrageiro cv. Mandobi aos seis meses após a colheita. In: CONGRESSO REGIONAL DE PESQUISA DO ESTADO DO ACRE, 2.; SEMINÁRIO DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA UFAC, 25., 2016, Rio Branco/Cruzeiro do Sul. Inovação: sustentabilidade e desenvolvimento regional: anais. Rio Branco, AC: Edufac, 2016. p. 192.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 59. | | CAVALCANTE, L. do N.; BENVINDO, F. D.; AZÊVEDO, H. S. F. da S.; SILVA, S. M. M.; SILVA, L. M. da; CAMPOS, T. de. Extração e amplificação de DNA e diversidade genética de açaí-solteiro. In: REUNIÃO ANUAL DA SOCIEDADE BRASILEIRA PARA O PROGRESSO DA CIÊNCIA, 69., 2017, Belo Horizonte. Anais... Belo Horizonte: SBPC, 2017. 4 p.| Biblioteca(s): Embrapa Acre. |
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| 60. | | SILVA, S. M. M.; AZÊVEDO, H. S. F. da S.; CAMPOS, T. de; WADT, L. H. de O.; PEREIRA, J. E. S. Extração de DNA para análises moleculares de bambu. In: CONGRESSO REGIONAL DE PESQUISA DO ESTADO DO ACRE, 2.; SEMINÁRIO DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA DA UFAC, 25., 2016, Rio Branco/Cruzeiro do Sul. Inovação: sustentabilidade e desenvolvimento regional: anais. Rio Branco, AC: Edufac, 2016. p. 115.| Biblioteca(s): Embrapa Acre; Embrapa Rondônia. |
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| Registros recuperados : 121 | |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Acre; Embrapa Rondônia. |
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Data corrente: |
02/09/2019 |
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Data da última atualização: |
11/11/2019 |
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Tipo da produção científica: |
Artigo em Periódico Indexado |
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Circulação/Nível: |
A - 2 |
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Autoria: |
AZÊVEDO, H. S. F. da S.; RUFINO, P. B.; AZEVEDO, J. M. A. de; SILVA, L. M. da; WADT, L. H. de O.; CAMPOS, T. de. |
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Afiliação: |
LUCIELIO MANOEL DA SILVA, CPAF-AC; LUCIA HELENA DE OLIVEIRA WADT, CPAF-RO; TATIANA DE CAMPOS, CPAF-AC. |
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Título: |
Preservation and maceration of amazon açai leaflet Tissue to obtain genomic DNA. |
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Ano de publicação: |
2019 |
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Fonte/Imprenta: |
Bioscience Journal, Uberlândia, v. 35, n. 4, p. 1188-1197, July/Aug. 2019. |
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Idioma: |
Inglês
Português |
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Conteúdo: |
The objective of this study was to test the efficiency of preservation and maceration methods for Euterpe precatoria leaflet tissue to obtain genomic DNA for molecular studies. The leaflets of E. precatoria were collected in an experimental field at Embrapa Acre, Brazil. The study was conducted in a completely randomized design with 10 replicates, in a 12 × 2 factorial structure, with 12 storage treatments (fresh; lyophiliser 3 days; refrigerator 3, 5, and 7 days; silica gel 7, 10, 20, and 30 days; and transport buffer 3, 5, and 7 days) and two leaf tissue maceration methods (liquid nitrogen and the TissueLyser®). Statistically significant differences in the obtained DNA concentration were found between the maceration and storage treatments. The TissueLyser® macerator produced higher DNA concentrations when compared to liquid nitrogen. For the storage treatments, five groups were formed based on DNA concentration when macerated with the TissueLyser® and two groups when macerated with liquid nitrogen. The DNA concentrations ranged from 285.00 ng/uL (7 days in transport buffer) to 702.00 ng/uL (30 days in silica gel) when the leaflets were macerated with liquid nitrogen, and from 572.73 ng/uL (30 days in silica gel) to 2,850.00 ng/uL (3 days in lyophiliser) using the TissueLyser® macerator. The DNA purity (A260/A280 nm) varied from 1.30 to 1.70 when the leaflets were macerated with liquid nitrogen and from 1.30 to 1.90 with the TissueLyser® macerator. Despite the variations in leaf tissue preservation and DNA concentration, all treatments were effective for DNA isolation and it was possible to amplify genomic regions of microsatellite markers by PCR. It was concluded that leaflets of E. precatoria stored in a lyophiliser and processed with an automatic macerator resulted in satisfactory DNA for molecular studies. MenosThe objective of this study was to test the efficiency of preservation and maceration methods for Euterpe precatoria leaflet tissue to obtain genomic DNA for molecular studies. The leaflets of E. precatoria were collected in an experimental field at Embrapa Acre, Brazil. The study was conducted in a completely randomized design with 10 replicates, in a 12 × 2 factorial structure, with 12 storage treatments (fresh; lyophiliser 3 days; refrigerator 3, 5, and 7 days; silica gel 7, 10, 20, and 30 days; and transport buffer 3, 5, and 7 days) and two leaf tissue maceration methods (liquid nitrogen and the TissueLyser®). Statistically significant differences in the obtained DNA concentration were found between the maceration and storage treatments. The TissueLyser® macerator produced higher DNA concentrations when compared to liquid nitrogen. For the storage treatments, five groups were formed based on DNA concentration when macerated with the TissueLyser® and two groups when macerated with liquid nitrogen. The DNA concentrations ranged from 285.00 ng/uL (7 days in transport buffer) to 702.00 ng/uL (30 days in silica gel) when the leaflets were macerated with liquid nitrogen, and from 572.73 ng/uL (30 days in silica gel) to 2,850.00 ng/uL (3 days in lyophiliser) using the TissueLyser® macerator. The DNA purity (A260/A280 nm) varied from 1.30 to 1.70 when the leaflets were macerated with liquid nitrogen and from 1.30 to 1.90 with the TissueLyser® macerator. Despite the variations in... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Açaí-solteiro; Acre; Amazonia Occidental; Amazônia Ocidental; CTAB method; DNA isolation; Embrapa Acre; Extracción; Hojas; Leaflet; Maceración; Rio Branco; Western Amazon. |
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Thesagro: |
Açaí; Campo Experimental; DNA; Extração; Folha; Maceração. |
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Thesaurus NAL: |
Euterpe precatoria; Extraction; Leaves; Maceration. |
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Categoria do assunto: |
--
G Melhoramento Genético |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/201498/1/Azevedo-et-al-2019-PresMacAcaiLeaflet.pdf
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/209322/1/26962.pdf
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Marc: |
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520 $aThe objective of this study was to test the efficiency of preservation and maceration methods for Euterpe precatoria leaflet tissue to obtain genomic DNA for molecular studies. The leaflets of E. precatoria were collected in an experimental field at Embrapa Acre, Brazil. The study was conducted in a completely randomized design with 10 replicates, in a 12 × 2 factorial structure, with 12 storage treatments (fresh; lyophiliser 3 days; refrigerator 3, 5, and 7 days; silica gel 7, 10, 20, and 30 days; and transport buffer 3, 5, and 7 days) and two leaf tissue maceration methods (liquid nitrogen and the TissueLyser®). Statistically significant differences in the obtained DNA concentration were found between the maceration and storage treatments. The TissueLyser® macerator produced higher DNA concentrations when compared to liquid nitrogen. For the storage treatments, five groups were formed based on DNA concentration when macerated with the TissueLyser® and two groups when macerated with liquid nitrogen. The DNA concentrations ranged from 285.00 ng/uL (7 days in transport buffer) to 702.00 ng/uL (30 days in silica gel) when the leaflets were macerated with liquid nitrogen, and from 572.73 ng/uL (30 days in silica gel) to 2,850.00 ng/uL (3 days in lyophiliser) using the TissueLyser® macerator. The DNA purity (A260/A280 nm) varied from 1.30 to 1.70 when the leaflets were macerated with liquid nitrogen and from 1.30 to 1.90 with the TissueLyser® macerator. Despite the variations in leaf tissue preservation and DNA concentration, all treatments were effective for DNA isolation and it was possible to amplify genomic regions of microsatellite markers by PCR. It was concluded that leaflets of E. precatoria stored in a lyophiliser and processed with an automatic macerator resulted in satisfactory DNA for molecular studies.
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