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Registro Completo |
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Biblioteca(s): |
Embrapa Florestas. |
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Data corrente: |
14/09/2009 |
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Data da última atualização: |
14/09/2009 |
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Autoria: |
MOURA, T. M. de; SEBBENN, A. M.; CHAVES, L. J.; COELHO, A. S. G.; OLIVEIRA, G. C. X.; KAGEYAMA, P. Y. |
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Título: |
Diversidade e estrutura genética espacial em populações fragmentadas de Solanum spp. do Cerrado, estimadas por meio de locos microssatélites. |
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Ano de publicação: |
2009 |
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Fonte/Imprenta: |
Scientia Forestalis, Piracicaba, v. 37, n. 82, p. 143-150, jun. 2009. |
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Idioma: |
Português |
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Conteúdo: |
O objetivo deste estudo foi quantificar e comparar com locos microssatélites os níveis de diversidade
genética e a estrutura genética espacial (EGE) em populações de Solanum lycocarpum e Solanum crinitum
situadas em área de Cerrado do estado de Goiás. Aproximadamente 60 árvores foram amostradas
e mapeadas em cada população, sendo uma natural e uma antropizada de cada espécie. Um maior
número médio de alelos por loco (A) foi detectado nas populações de S. lycocarpum (5,29 a 7,13 alelos),
comparativamente às populações de S. crinitum (3,61 a 5,52 alelos). A heterozigosidade observada (Ho)
foi maior que a esperada (He) em S. lycocarpum, sugerindo excesso de heterozigotos em relação ao modelo
de equilíbrio de Hardy-Weinberg (F=-0,184, P<0,05;F=-0,082, P<0,1) e menor nas populações de S.
crinitum, sugerindo excesso de homozigotos (F=0,128, P<0,05;F=0,071, P<0,1). Contudo, diferenças significativas
entre as populações das espécies foram encontradas apenas para Ho (P<0,01) e He (P<0,01).
Todas as populações apresentaram EGE. As populações de S. lycocarpum apresentaram EGE significativa
até a distância máxima de 50 m e as de S. crinitum até 80 m. A EGE observada nas populações de
ambas as espécies sugere que sementes coletadas de polinização aberta apresentem certos níveis de
endogamia biparental. |
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Palavras-Chave: |
Lobeira; Microssatélites. |
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Thesagro: |
Cerrado. |
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Categoria do assunto: |
-- |
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Marc: |
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Registro original: |
Embrapa Florestas (CNPF) |
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Biblioteca |
ID |
Origem |
Tipo/Formato |
Classificação |
Cutter |
Registro |
Volume |
Status |
URL |
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Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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Data corrente: |
24/08/2017 |
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Data da última atualização: |
23/09/2019 |
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Tipo da produção científica: |
Resumo em Anais de Congresso |
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Autoria: |
BATISTA, R. I. T. P.; CAMARGO, L. S. de A.; SOUZA FABJAN, J. M. G.; PRATES, J. F.; TREVIZAN, J. T.; BRANDÃO, F. Z.; FONSECA, J. F. da. |
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Afiliação: |
Ribrio Ivan Tavares Pereira Batista; LUIZ SERGIO DE ALMEIDA CAMARGO, CNPGL; Joanna Maria Gonçalves de Souza Fabjan, Universidade Federal Fluminense (UFF) - Niterói, RJ, Brazil; Jader Forquim Prates; Juliane Teramachi Trevizan; Felipe Zandonadi Brandao; JEFERSON FERREIRA DA FONSECA, CNPC. |
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Título: |
Goat incubator: the doe as a life incubator of bovine oocytes - first step. |
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Ano de publicação: |
2017 |
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Fonte/Imprenta: |
Animal Reprodroduction, v. 14, n. 3, p. 738, Jul./Sept. 2017. |
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Idioma: |
Inglês |
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Notas: |
Proceedings of the 31st Annual Meeting of the Brazilian Embryo Technology Society (SBTE); Cabo de Santo Agostinho, PE, Brazil, August 17th to 19th, 2017. Abstracts. |
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Conteúdo: |
Despite significant improvements in the in vitro production of cattle embryos, the suboptimal in vitro culture environment still limits the embryo quality and production. Techniques that associate the advantages of in vivo and in vitro systems, such as intrafollicular transfer of immature oocytes, have been proposed mainly to increase the embryo quality. In this context, we tried to use a goat as live incubator and associated nonsurgical embryo transfer techniques in small ruminants to perform ex situ (in vivo) maturation of bovine oocytes. For this, immature bovine cumulus-oocyte complexes (COCs) of grade 1 and 2 were randomly distributed into two groups for in vitro (IVM; n = 38) and ex situ (ESM; n = 40) maturation. The IVM was performed for a period of 24 h in TCM-199 medium (Gibco Life Technologies, Inc., Grand Island, NY, USA) supplemented with 20 mg/mL of FSH (Pluset, Calier, Barcelona, Spain), 0.36 mM sodium pyruvate (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA), 10 mM sodium bicarbonate (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA) and 50 mg/mL streptomycin/penicillin (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA) at 38.8 ºC in an atmosphere of 5% CO2 in air with maximum humidity. For ESM, a pre-synchronized nulliparous goat (12 months old) received 40 immature COCs in the uterine horn apice by transcervical route (Fonseca et al., 2014 Arq. Bras. Med.vet. Zootec) and 24 h after the procedure the structures were retrieved by the uterine flushing (Fonseca et al., 2013 Small Rumin Res). For analysis of the nuclear maturation rate and lipid quantification, the oocytes were denuded (0.1% hyaluronidase), fixed (4% paraformaldehyde) and stained with 10 ?g/mL Hoechst 33342 and 10 ?g/mL Nile Red (Molecular Probes, Inc., Eugene, OR, USA) dissolved in physiological saline (0.9% NaCl) with 1mg/mL polyvinylpyrrolidone. Oocytes displaying metaphase II plate were considered matured. The lipid amount was inferred by measuring the fluorescence intensity using the ImageJ program and fluorescence intensity were compared by Student's t-test. Forty-seven percent of the structures were recovered after uterine flushing (19/40). The nuclear maturation rate was 94.5% (18/19) and 81.6% (31/38) for ESM and IVM groups, respectively. In vitro-matured oocytes contained more lipid droplets, expressed as a higher (p < 0.05) amount of emitted fluorescence light (858 ± 73 arbitrary fluorescence units) than ex situ-matured oocytes (550 ± 64 arbitrary fluorescence units). This is the first report associating nonsurgical embryo transfer techniques with goat as live incubator for maturation of bovine oocytes. We conclude that transcervical transfer of bovine oocytes to uterine goat may be an alternative to in vitro maturation aiming the reduction of lipids without compromising nuclear maturation. Further studies are required to improve the oocyte recovery rate. MenosDespite significant improvements in the in vitro production of cattle embryos, the suboptimal in vitro culture environment still limits the embryo quality and production. Techniques that associate the advantages of in vivo and in vitro systems, such as intrafollicular transfer of immature oocytes, have been proposed mainly to increase the embryo quality. In this context, we tried to use a goat as live incubator and associated nonsurgical embryo transfer techniques in small ruminants to perform ex situ (in vivo) maturation of bovine oocytes. For this, immature bovine cumulus-oocyte complexes (COCs) of grade 1 and 2 were randomly distributed into two groups for in vitro (IVM; n = 38) and ex situ (ESM; n = 40) maturation. The IVM was performed for a period of 24 h in TCM-199 medium (Gibco Life Technologies, Inc., Grand Island, NY, USA) supplemented with 20 mg/mL of FSH (Pluset, Calier, Barcelona, Spain), 0.36 mM sodium pyruvate (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA), 10 mM sodium bicarbonate (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA) and 50 mg/mL streptomycin/penicillin (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA) at 38.8 ºC in an atmosphere of 5% CO2 in air with maximum humidity. For ESM, a pre-synchronized nulliparous goat (12 months old) received 40 immature COCs in the uterine horn apice by transcervical route (Fonseca et al., 2014 Arq. Bras. Med.vet. Zootec) and 24 h after the procedure the structures were retrieved by the uterine flushing (Fonseca et al., 2013 Small Rumin Res). For analy... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Embryo Technology; Maturation; Non-surgical collection; Tecnologia do embrião. |
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Thesagro: |
Cultura In Vitro; Maturação artificial; Ovelha; Ovino; Reprodução animal. |
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Thesaurus NAL: |
Ewes; In vitro culture; In vitro fertilization; Ova; Reproduction; Sheep. |
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Categoria do assunto: |
L Ciência Animal e Produtos de Origem Animal |
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URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/163010/1/cnpc-2017-Goat.pdf
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Marc: |
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520 $aDespite significant improvements in the in vitro production of cattle embryos, the suboptimal in vitro culture environment still limits the embryo quality and production. Techniques that associate the advantages of in vivo and in vitro systems, such as intrafollicular transfer of immature oocytes, have been proposed mainly to increase the embryo quality. In this context, we tried to use a goat as live incubator and associated nonsurgical embryo transfer techniques in small ruminants to perform ex situ (in vivo) maturation of bovine oocytes. For this, immature bovine cumulus-oocyte complexes (COCs) of grade 1 and 2 were randomly distributed into two groups for in vitro (IVM; n = 38) and ex situ (ESM; n = 40) maturation. The IVM was performed for a period of 24 h in TCM-199 medium (Gibco Life Technologies, Inc., Grand Island, NY, USA) supplemented with 20 mg/mL of FSH (Pluset, Calier, Barcelona, Spain), 0.36 mM sodium pyruvate (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA), 10 mM sodium bicarbonate (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA) and 50 mg/mL streptomycin/penicillin (Sigma Chemical, St. Louis, MO, USA) at 38.8 ºC in an atmosphere of 5% CO2 in air with maximum humidity. For ESM, a pre-synchronized nulliparous goat (12 months old) received 40 immature COCs in the uterine horn apice by transcervical route (Fonseca et al., 2014 Arq. Bras. Med.vet. Zootec) and 24 h after the procedure the structures were retrieved by the uterine flushing (Fonseca et al., 2013 Small Rumin Res). For analysis of the nuclear maturation rate and lipid quantification, the oocytes were denuded (0.1% hyaluronidase), fixed (4% paraformaldehyde) and stained with 10 ?g/mL Hoechst 33342 and 10 ?g/mL Nile Red (Molecular Probes, Inc., Eugene, OR, USA) dissolved in physiological saline (0.9% NaCl) with 1mg/mL polyvinylpyrrolidone. Oocytes displaying metaphase II plate were considered matured. The lipid amount was inferred by measuring the fluorescence intensity using the ImageJ program and fluorescence intensity were compared by Student's t-test. Forty-seven percent of the structures were recovered after uterine flushing (19/40). The nuclear maturation rate was 94.5% (18/19) and 81.6% (31/38) for ESM and IVM groups, respectively. In vitro-matured oocytes contained more lipid droplets, expressed as a higher (p < 0.05) amount of emitted fluorescence light (858 ± 73 arbitrary fluorescence units) than ex situ-matured oocytes (550 ± 64 arbitrary fluorescence units). This is the first report associating nonsurgical embryo transfer techniques with goat as live incubator for maturation of bovine oocytes. We conclude that transcervical transfer of bovine oocytes to uterine goat may be an alternative to in vitro maturation aiming the reduction of lipids without compromising nuclear maturation. Further studies are required to improve the oocyte recovery rate.
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Esconder MarcMostrar Marc Completo |
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Registro original: |
Embrapa Caprinos e Ovinos (CNPC) |
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