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| Registros recuperados : 111 | |
| 81. |  | DE MORI, C.; CAMARGO, A. C. de; NOVO, A. L. M.; PALHARES, J. C. P.; BERGAMASCHI, M. A. C. M.; BARIONI JUNIOR, W.; VINHOLIS, M. de M. B. Índice de atualização tecnológica para propriedades leiteiras: IAT-Leite. São Carlos, SP: Embrapa Pecuária Sudeste, 2020. 18 p. (Embrapa Pecuária Sudeste. Comunicado técnico, 107).| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 82. | | DE MORI, C.; BERTAGNOLLI, P. F.; MORAES, R. M. A. de; COSTAMILAN, L. M.; IGNACZAK, J. C.; ROESSING, A. C.; LANGE, C.; MENEZES, V. G.; FISCHER, M. M. Levantamento de uso de tecnologias em lavouras de soja na metade sul do Estado do Rio Grande do Sul. In: COSTAMILAN, L. M.; BERTAGNOLLI, P. F.; MORAES, R. M. A. de (Org.). Soja: resultados de pesquisa 2005/2006. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2006. p. 222-271. (Embrapa Trigo. Documentos, 68).| Biblioteca(s): Embrapa Soja. |
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| 84. | | MARSARO JÚNIOR, A. L.; PEREIRA, P. R. V. da S.; PIRES, J. L. F.; STRIEDER, M. L.; DE MORI, C.; SCARPARO, A. P.; LAU, D.; PANIZZI, A. R. Manejo de insetos pragas na sucessão trigo-soja em Passo Fundo, RS. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2017. 31 p. (Embrapa Trigo. Documentos online, 169).| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 85. | | FERREIRA, P. E. P.; TOMM, G. O.; MARSARO JÚNIOR, A. L.; ANTUNES, J. M.; DE MORI, C.; DOSSA, A. A.; NORONHA, A.; PORTO, R. G. Distribuição espacial do cultivo de canola nos principais estados produtores do Brasil, em 2016. In: SIMPÓSIO BRASILEIRO DE CANOLA, 1., 2017, Passo Fundo. Anais... Brasília, DF: Embrapa, 2017. p. 253-261.| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 86. | | PIRES, J. L. F.; SANTOS, H. P. dos; SCHEEREN, P. L.; DE MORI, C.; CASTRO, R. L. de; GARRAFA, M.; BENEDETI, V.; CAIERAO, E.; PILAU, J. Avaliação de genótipos de trigo em diferentes níveis de manejo. In: REUNIÃO DA COMISSÃO BRASILEIRA DE PESQUISA DE TRIGO E TRITICALE, 3., 2009, Veranópolis. Ata e resumos... Porto Alegre: Comissão Brasileira de Pesquisa de Trigo e Triticale: Fepagro; Veranóplis: ASAV; Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2009. Ecologia, trabalho 89. 1 p.| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 87. | | PIRES, J. L. F.; SANTOS, H. P. dos; SCHEEREN, P. L.; MIRANDA, M. Z. de; DE MORI, C.; CASTRO, R. L. de; CAIERAO, E.; PILAU, J. Avaliação de cultivares de trigo em diferentes níveis de manejo na região do Planalto do Rio Grande do Sul. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2009. 23 p. html. (Embrapa Trigo. Boletim de pesquisa e desenvolvimento online, 74).| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 88. | | SCARPARO, A. P.; DE MORI, C.; MARSARO JÚNIOR, A. L.; FERREIRA, P. E. P.; PEREIRA, P. R. V. da S.; TOMM, G. O. Caracterização do manejo de insetos-praga adotado por produtores rurais no cultivo da canola no PR e RS. In: MOSTRA DE INICIAÇÃO CIENTÍFICA, 11.; MOSTRA DE PÓS-GRADUAÇÃO DA EMBRAPA TRIGO, 8., 2016, Passo Fundo. Resumos... Brasília, DF: Embrapa, 2016. p. 43.| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 94. | | MARSARO JUNIOR, A. L.; DE MORI, C.; FERREIRA, P. E. P.; WADT, L. G. R.; CHAIM, A.; TOMM, G. O.; PEREIRA, P. R. V. da S. Tecnologias de aplicação de inseticidas empregadas por agricultores que cultivam canola no Rio Grande do Sul e no Paraná. Passo Fundo, RS: Embrapa Trigo, 2019. (Embrapa Trigo. Circular Técnica, 47).| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 95. | | HARGER, N.; PASINATO, A.; CAIERAO, E.; PIRES, J. L. F.; PIMENTEL, M. B. M.; IGNACZAK, J. C.; MAURINA, A. C.; DE MORI, C.; FERREIRA FILHO, A. Uso de tecnologias em lavouras de trigo no Paraná, período 1994 a 2010. In: REUNIÃO DA COMISSÃO BRASILEIRA DE PESQUISA DE TRIGO E TRITICALE, 5., 2011, Dourados. Ata e resumos... Dourados: Embrapa Agropecuária Oeste, 2011. 1 CD-ROM.| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 96. | | DE MORI, C.; FERREIRA, P. E. P.; MARSARO JUNIOR, A. L.; TOMM, G. O.; COSTAMILAN, L. M.; VARGAS, L.; SILVA, F. A. N.; PEREIRA, P. R. V. da S. Levantamento de tecnologias empregadas no cultivo de canola pelos produtores do Rio Grande do Sul, Paraná e Minas Gerais. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2019. 56 p. (Embrapa Trigo. Documentos online, 181).| Biblioteca(s): Embrapa Pecuária Sudeste. |
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| 97. | | DE MORI, C.; FERREIRA, P. E. P.; MARSARO JUNIOR, A. L.; TOMM, G. O.; COSTAMILAN, L. M.; VARGAS, L.; SILVA, F. A. N.; PEREIRA, P. R. V. da S. Levantamento de tecnologias empregadas no cultivo de canola pelos produtores do Rio Grande do Sul, Paraná e Minas Gerais. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2019. 56 p. (Embrapa Trigo. Documentos online, 181).| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 98. | | DE MORI, C.; AZEVEDO, D. M. M. R.; SANTOS, J. L. S. dos; DIAS, J. A.; LANA, M. S.; PEREIRA, M. de A.; BUSTAMANTE, P. G.; AMARAL, T. B.; VASCONCELOS, H. E. M.; SILVA, A. C. Mulheres na pecuária. Brasília, DF: Embrapa, 2023. 60 p. (Coleção Mulheres Rurais no Brasil). ODS 5 - Igualdade de gênero.| Biblioteca(s): Embrapa Agricultura Digital; Embrapa Agroindústria Tropical; Embrapa Alimentos e Territórios; Embrapa Gado de Leite; Embrapa Meio-Norte; Embrapa Pecuária Sudeste; Embrapa Pecuária Sul; Embrapa Rondônia. |
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| 99. | | FONTANELI, R. S.; SANTOS, H. P. dos; FONTANELI, R. S.; DEL DUCA, L. de J.; RODRIGUES, O.; TEIXEIRA, M. C. C.; NASCIMENTO JUNIOR, A. do; MINELLA, E.; CAIERÃO, E.; DE MORI, C.; OLIVEIRA, J. T. de; MARIANI, F. Potencial de rendimento de cereais de inverno de duplo propósito. In: FONTANELI, REN. S.; SANTOS, H. P. dos; FONTANELI, ROB. S. (Ed.). Forrageiras para integração lavoura-pecuária-floresta na região sul-brasileira. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2009. Cap. 5, p. 97-120.| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| 100. | | CARAFFA, M.; RIFFEL, C. T.; STRIEDER, M. L.; PIRES, J. L. F.; DE MORI, C.; CAIERAO, E.; PEREIRA, P. R. V. da S.; MARSARO JÚNIOR, A. L.; FAE, G. S. Estratégias de sucessão trigo/aveia preta-soja para sistemas de produção de grãos no Noroeste do Rio Grande do Sul. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2016. 21 p. (Embrapa Trigo. Circular técnica online, 29).| Biblioteca(s): Embrapa Trigo. |
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| Registros recuperados : 111 | |
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 | Acesso ao texto completo restrito à biblioteca da Embrapa Caprinos e Ovinos. Para informações adicionais entre em contato com cnpc.biblioteca@embrapa.br. |
Registro Completo
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Biblioteca(s): |
Embrapa Caprinos e Ovinos. |
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Data corrente: |
10/12/2021 |
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Data da última atualização: |
10/12/2021 |
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Tipo da produção científica: |
Artigo em Periódico Indexado |
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Circulação/Nível: |
A - 2 |
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Autoria: |
ARAÚJO, J. F.; ANDRIOLI, A.; PINHEIRO, R. R.; PEIXOTO, R. M.; SOUSA, A. L. M. de; AZEVEDO, D. A. A. de; LIMA, A. M. C.; NOBRE, J. A.; AMARAL, G. P.; BRANDÃO, I. S.; TEIXEIRA, M. F. da S. |
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Afiliação: |
JUSCILÂNIA FURTADO ARAÚJO, State University of Ceará - Fortaleza, Ceará, Brazil; ALICE ANDRIOLI PINHEIRO, CNPC; RAYMUNDO RIZALDO PINHEIRO, CNPC; RENATO MESQUITA PEIXOTO, Scholarship for Regional Scientific Development of the National Council for Scientific and Technological Development (DCR-CNPq/FUNCAP), Level C, Brasilia, Distrito Federal, Brazil; ANA LÍDIA MADEIRA DE SOUSA; DALVA ALANA ARAGÃO DE AZEVEDO, State University of Ceará - Fortaleza, Ceará, Brazil; ANA MILENA CESAR LIMA, Federal University of Piauí - Teresina, Piauí, Brazil; JULIANA ARAÚJO NOBRE, State University of Ceará - Fortaleza, Ceará, Brazil; GABRIEL PAULA AMARAL, State University of Acaraú Valley, Sobral, Ceará, Brazil; IANE SOUSA BRANDÃO, State University of Acaraú Valley, Sobral, Ceará, Brazil; MARIA FÁTIMA DA SILVA TEIXEIRA, State University of Ceará - Fortaleza, Ceará, Brazil. |
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Título: |
Detection and isolation of small ruminant lentivirus in the amniotic fluid of goats. |
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Ano de publicação: |
2021 |
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Fonte/Imprenta: |
Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases, v. 78, 101693, Oct. 2021. |
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DOI: |
https://doi.org/10.1016/j.cimid.2021.101693 |
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Idioma: |
Inglês |
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Conteúdo: |
Abstract:The objective of this study was to verify the presence of small ruminant lentivirus in the amniotic fluid of goats using molecular tests and viral isolation by cocultivation in the amniotic fluid of naturally infected goats. The study analyzed eight goats: seven were small ruminant lentivirus-positive and one was negative. The amniotic fluid was collected from each of the eight animals during cesarean section at 147 days of pregnancy. Cocultivation was undertaken using secondary goat nictitating membrane cell cultures obtained by explant from a small ruminant lentivirus-negative calf followed by trypsinization and sub-cultivation of the cells for 63 days. During this period, five supernatant collections were performed for DNA extraction and subsequent nested polymerase chain reaction. DNA was extracted from the amniotic fluid after 3 h of cellular sedimentation, from which a sample of 600 ?L was taken from the sediment and another 600 ?L sample from the supernatant. After DNA extraction, nested polymerase chain reaction was performed. Of the eight goats, 62.5 % (05/08) were small ruminant lentivirus-positive, with 43.75 % (07/16) of the total samples positive when considering the two repetitions (supernatant and cell sediment). Moreover, positivity was confirmed by small ruminant lentivirus pro-viral DNA amplification in the cell supernatant throughout the cocultivation period. Small ruminant lentivirus were present in the amniotic fluid samples from the naturally infected goats indicating an intrauterine transmission route. Moreover, this biological fluid can be adopted for the diagnosis of these lentiviruse because it is an important risk factor related to intrauterine transmission. MenosAbstract:The objective of this study was to verify the presence of small ruminant lentivirus in the amniotic fluid of goats using molecular tests and viral isolation by cocultivation in the amniotic fluid of naturally infected goats. The study analyzed eight goats: seven were small ruminant lentivirus-positive and one was negative. The amniotic fluid was collected from each of the eight animals during cesarean section at 147 days of pregnancy. Cocultivation was undertaken using secondary goat nictitating membrane cell cultures obtained by explant from a small ruminant lentivirus-negative calf followed by trypsinization and sub-cultivation of the cells for 63 days. During this period, five supernatant collections were performed for DNA extraction and subsequent nested polymerase chain reaction. DNA was extracted from the amniotic fluid after 3 h of cellular sedimentation, from which a sample of 600 ?L was taken from the sediment and another 600 ?L sample from the supernatant. After DNA extraction, nested polymerase chain reaction was performed. Of the eight goats, 62.5 % (05/08) were small ruminant lentivirus-positive, with 43.75 % (07/16) of the total samples positive when considering the two repetitions (supernatant and cell sediment). Moreover, positivity was confirmed by small ruminant lentivirus pro-viral DNA amplification in the cell supernatant throughout the cocultivation period. Small ruminant lentivirus were present in the amniotic fluid samples from the naturally i... Mostrar Tudo |
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Palavras-Chave: |
Amniotic sac; Intrauterine transmission; Retrovirus; SRLVs; Vertical disease transmission. |
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Thesaurus NAL: |
Body fluids; Disease diagnosis; Goat diseases; Goats; Risk factors. |
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Categoria do assunto: |
H Saúde e Patologia |
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Marc: |
LEADER 02839naa a2200373 a 4500
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245 $aDetection and isolation of small ruminant lentivirus in the amniotic fluid of goats.$h[electronic resource]
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520 $aAbstract:The objective of this study was to verify the presence of small ruminant lentivirus in the amniotic fluid of goats using molecular tests and viral isolation by cocultivation in the amniotic fluid of naturally infected goats. The study analyzed eight goats: seven were small ruminant lentivirus-positive and one was negative. The amniotic fluid was collected from each of the eight animals during cesarean section at 147 days of pregnancy. Cocultivation was undertaken using secondary goat nictitating membrane cell cultures obtained by explant from a small ruminant lentivirus-negative calf followed by trypsinization and sub-cultivation of the cells for 63 days. During this period, five supernatant collections were performed for DNA extraction and subsequent nested polymerase chain reaction. DNA was extracted from the amniotic fluid after 3 h of cellular sedimentation, from which a sample of 600 ?L was taken from the sediment and another 600 ?L sample from the supernatant. After DNA extraction, nested polymerase chain reaction was performed. Of the eight goats, 62.5 % (05/08) were small ruminant lentivirus-positive, with 43.75 % (07/16) of the total samples positive when considering the two repetitions (supernatant and cell sediment). Moreover, positivity was confirmed by small ruminant lentivirus pro-viral DNA amplification in the cell supernatant throughout the cocultivation period. Small ruminant lentivirus were present in the amniotic fluid samples from the naturally infected goats indicating an intrauterine transmission route. Moreover, this biological fluid can be adopted for the diagnosis of these lentiviruse because it is an important risk factor related to intrauterine transmission.
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773 $tComparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases$gv. 78, 101693, Oct. 2021.
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